الإجهاد الاسموزي يعزز النشاط المضاد للميكروبات لنبات الأرضه Ochradenus Baccatus Delile المزروع داخل الانابيب في المختبر ضد ميكروبات مختاره
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v16i1.1066الكلمات المفتاحية:
نشاط مضاد للميكروبات، داخل الانابيب، السويقات، نبات الارضه، عامل أسموزي، التثبيط عند التركيز الاقل (MIC)، سكر مانيتول، سكر سكروزالملخص
نبات الارضة Ochradenus baccatus Delile هو نبات طبي بري ينتج العديد من المركبات الطبيعية ذات الفوائد الطبية. في هذه الدراسة، تم تعريض الفروع الصغيرة من نبات الارضه Ochradenus baccatus داخل الانابيب الى ظروف الإجهاد الاسموزي و التي تتكون من وسائط غذائية صلبة موراشيج و سكوج Murashige و Skoog (MS) و التي تحتوي على عوامل أسموزية مختلفة (أنواع سكريات) في مدى من التركيزات (بما في ذلك 0.1 ، 0.2 ، 0.3 أو 0.4 مولار) . كان الهدف هو اختبار تأثير هذه السكريات على نمو السيقان الدقيقة للنبات داخل الانابيب والأنشطة المضادة للميكروبات لهذا النبات ضد سلالات مختارة من البكتيريا وسلالة واحدة من الفطريات. لقد وجدنا أن عوامل النمو (بما في ذلك طول النبتة وتكاثرها) من سيقان نبات الارضه داخل الانابيبOchradenus baccatus انخفضت مع زيادة تركيز السكر في الوسط الغذائي ، ولكن عند أعلى تركيز 0.4 مولار مانيتول، لم تتمكن السويقات الدقيقة داخل الانابيب من البقاء. بشكل عام ، كانت المستخلصات المائية للسويقات الدقيقة للنبات داخل الانابيب المعرضه للإجهاد الاسموزي أكثر فعالية ضد السلالات الميكروبية المختبرة من المستخلصات الميثانولية في معظم التجارب. تم العثور على المكورات العنقودية الذهبية Staphylococcus aureus لتكون الميكروب الأكثر تضررا من كلا النوعين من المستخلصات. أيضًا ، أدى تعريض البراعم الدقيقة للإجهاد الاسموزي إلى تحسين القوى المضادة للميكروبات في كلا النوعين من المستخلصات. المثير للاهتمام أن المستخلص المائي السيقان الدقيقة للنبات داخل الانابيب التي نمت مسبقًا في الوسط الغذائي باستخدام (0.4 مولار سكروز) عملت على تثبيط نمو المكورات العنقودية الذهبية Staphylococcus aureus والخمائر البيضاء Candida albicans باستخدام طريقة التثبيط عند التركيز الاقل (MIC) بقيم (0.195 ، 0.78 مغم / مل). كانت هذه القيم مماثلة لتلك التي تم الحصول عليها من العلاجات بالمضادات الحيوية. يُقترح أيضًا استخدام تقنيات التكنولوجيا الحيوية الأخرى مثل التحول الجيني لإنتاج سلالات النخبة من Ochradenus baccatus مع إمكانات فائقة لمضادات الميكروبات.
المراجع
Gurgel C. S., Adriana S. R., Livia S. C.et al. Antibacterial Activity of Field-Grown Plants, In Vitro Propagated Plants, Callus and Cell Suspension Cultures of Cleome rosea Vahl, Journal of Pharmacy Research, 2012, 5(6):3304-3308.
Ahmad, M., & Wajid, M. Plants as potential source of antimicrobial agents. Journal of Pharmacy and Alternative Medicine, 2013, 2(3), 18-25.
Sowndhariya, S. S., Ravi, S., Dharani, J. D., et al. Chemical Constitution, In-silico Molecular Docking Studies and Antibacterial Activity of Flower Essential Oil of Artabotrys hexapetalus. Jordan j. pharm. sci., 2022, 15(3), 341-354.
Ha, V. T., & Le, N. T. Extraction of anthocyanins from Clitoria ternatea L. petals in Vietnam and determination of its antioxidant and antimicrobial activities. Jordan j. pharm. sci. 2022, 15(2), 145-157.
Bhinge, S. D., Randive, D. S., Bhutkar, M. A. et al. Synergistic effects of neem (Azadirachta indica L.) leaves extract with conventional antibiotic against gram-positive and negative microorganism. Jordan j. pharm. sci.2022, 15(2), 276-288.
Al-Qudah, T. S. Discovering antimicrobial powers of some herbs used by Bedouin in the Jordanian Petra. Eco. Env. & Cons, 2020, 26(1), 433-440.
WHO, Traditional medicine strategy: 2014-2023. 1. Medicine, Traditional. 2. Complementary Therapies. 3. Health Planning. 4. Delivery of Health Care. 5. Health Policy, 2013.
WHO, Infections and Infectious Diseases A Manual for Nurses and Midwives in the European Region, 2001.
Ababutain, I. M. Antimicrobial activity of ethanolic extracts from some medicinal plant. Australian Journal of Basic and Applied Sciences, 2011, 5(11), 678-683.
Burman, S., & Chandra, G. A. study on antibacterial efficacy of different extracts of Artocarpus chama fruits and identification of bioactive compounds in the most potent extract. Jordan j. pharm. sci., 2022, 15(1), 70-81.
Salvador M. J., Pereira P. S., França S. C., et al. Comparative Study of Antibacterial and Antifungal Activity of Callus Culture and adult plants Extracts from Alternantheramaritime, (Amaranhtaceae), Brazilian Journal of Microbiology, 2003, 34:131-136.
Shatnawi, M., Osman, N. A. E., Shibli, R., et al. Effect of Heavy Metal on the In vitro Growth of Paronchia argentea and its Antimicrobial Activity. Ecological Engineering & Environmental Technology, 2021, 22.
Alenizi, A., Shibli, R. A., Tahtamouni, R. W., et al. In Vitro Propagation and Enhancement of Quercetins and Isorhamnetin Production in Wild Paronychia argentea L. Jordan j. pharm. sci., 2020, 13(1).
Mherat, M., Shatnawi, M., Shibli, R., et al. (2022). Clonal propagation of Tetragonolobus palaestinus Bioss: A Jordanian medical plant. Acta agriculturae Slovenica, 2022, 118(3), 1-9.
Al-Eisawi, D. M. H. Flora of Jordan Checklist, Revised. The University of Jordan Press, 2013.
Miller, A. G. A Revision of Ochradenus – Notes of Royal botanic garden, Edinburgh, 1984,1(3): 491-594.
Kumar, S. and Pandey, A., Chemistry and Biological Activities of Flavonoids, The Scientific World Journal. 2013, 1-16.
Soliman, G. A., Donia, A. E. R. M., Awaad, A. S., et al. Effect of Emex spinosa, Leptadenia pyrotechnica, Haloxylon salicornicum and Ochradenus baccatus extracts on the reproductive organs of adult male rats. Pharmaceutical Biology, 2012, 50(1), 105-112.
Al-Omar, M. S., Eldeeb, H. M., Mobark, M. A.,et al. Antimicrobial activity and histopathological safety evidence of Ochradenus baccatus Delile: A medicinally important plant growing in Saudi Arabia. Pharmacognosy Research, 2020, 12(2): 131-136
Hussain M., Fareed S., Ansari S., et al. Current Approaches Toward Production of Secondary Plant Metabolites, Journal of Pharmacy and Bioallied Sciences, 2012, 4(1):10-20.
Mulabagal V. and Tsay H., Plant Cell Cultures - An Alternative and Efficient Source for the Production of Biologically Important Secondary Metabolites, International Journal of Applied Science and Engineering, 2004, 2(1): 29 - 48.
Al Qurainy, F., Nadeem, M., Khan, S. et al. Efficient regeneration of a potential medicinal plant Ochradenus baccatus Delile from cotyledon and shoot axis., Pakistan Journal of Botany, 2013, 45(2), 501-505.
Murashige T. and Skoog T. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Plant Physiol., 1962, 15: 473-497.
Sudhersan, C., Aboel-nil M. and Hussain, J., Tissue Culture Technology for Conservation and Propagation of Certain Native Plants, Journal of Arid Environment, 2003, 54:133-147.
Oka, Y. S., Tkachia, N. S., Trabelcyb B. and Gerchmanbn Y. Nematicidal Activity of Ochradenus baccatus Against the Root-knot Nematode Meloidogyne javanica, Plant Pathology, 2014, 63, 221–231.
Ambrozin R. P., Silva Leite1 A. C., Vieira M.et al. Screening of Leishmania APRT Enzyme Inhibitors, Pharmazie 2005, 60: 781–784.
Karaman F. ¸Sahin, M., Güllüce, H. et al. Antimicrobial Activity of Aqueous and Methanol Extracts of Juniperus oxycedrus L., I ., Journal of Ethnopharmacology, 2003, 85:231–235.
Scorzoni L., Benaducci T., Almeida A. M. F.et al. , Antifungal activity of Natural Products Against Medical Yeasts Candida sp and Cryptococcus sp, Brazilian Journal of Microbiology, 2007, 38:391-397.
Jorgensen, J. and Ferraro M., (2009), Antimicrobial Susceptibility Testing: A review of general principles and contemporary practices, Medical Microbiology, 2009, 49:1749–55.
Younes L. S., Shibli R. and Qudah T., Term Conservation of Achillea fragrantissima Forssk Microshoots, Jordan Journal of Agricultural sciences, 2016, 12(1):137-15
Tahtamouni R., Shibli R., Abdallat A. et al. Analysis of Growth, Oil Yield, and Carvacrol in Thymbra spicata L. after Slow-Growth Conservation, Turkish Journal of Agriculture and Forestry 2016, 40: 213-221.
Rabaa, M., Shibli, R. A., & Shatnawi, M. A. In vitro medium term conservation of felty germander (Teucrium Polium L.) micro-shoots. Jordan J Agric Sci, 2012, 8, 523-544.
Wani S. H., Sofi P. A., Gosal S. S. et al. (2010), In Vitro Screening of Rice (Oryza sativa L) Callus for Drought Tolerance, Communications in Biometry and Crop Science, 2010, 5(2): 108–115.
Hadi S. M., Ibrahim K. M. and Yousif S. I., Effect of Shock and Elevated Levels of Mannitol on Callus Growth, Regeneration and Proline Exposure in Ruta graveolens Cultures, International Journal of Current Microbiology Applied Science, 2014, 3(11):479-488.
Shibli R., Shtanawi A., Subaih S. et al. In Vitro Conservation and Cryopreservation of Plant Genetic Resources: A Review, World Journal of Agricultural Sciences, 2006, 2(4): 372 – 382.
Fowler, M. W. Commercial applications and economic aspects of mass plant cell culture. 1983, In Seminar series-Society for Experimental Biology.
Zhang YH, Zhong JJ, Yu JT. Effect of osmotic pressure on cell growth and production of ginseng saponin and polysaccharide in suspension cultures of Panax notoginseng . Biotechnol Lett. 1995, 17:1347–1350.
Murthy H. N., Vijayalaxmi S. Dandin, Jian-Jiang Z.,et al. Strategies for Enhanced Production of Plant Secondary Metabolites from Cell and Organ Cultures: Chapter 20. Springer Science+Business Media Dordrecht 471 K.-Y. 2014, Paek et al. (eds.), Production of Biomass and Bioactive Compounds Using Bioreactor Technology, https://doi.org/10.1007/978-94-017-9223-3_20 Pp: 471-509.
Sari, Y. P., Kusumawati, E., Saleh, C. et al. Effect of sucrose and plant growth regulators on callogenesis and preliminary secondary metabolic of different explant Myrmecodia tuberosa. Nusantara Bioscience, 2018, 10(3), 183-192.
https://doi.org/10.13057/nusbiosci/n100309
Park YG, Kim SJ, Kang YM, et al. Production of ginkgolides and bilobalide from optimized the Ginkgo biloba cell cultures. Biotechnol Bioprocess Eng. 2004, 9:41–46
Tao, C., & He, B. B. Isolation of intact glucosinolates from mustard seed meal to increase the sustainability of biodiesel utilization. In 2004 ASAE Annual Meeting (p. 1), 2004, American Society of Agricultural and Biological Engineers.
Al-Saleh M, Shibli R, Al-Qadiri H, et al. Investigating Antimicrobial Potential of in vitro Grown Microshoots and Callus Cultures of Ammi visnaga (L.) Lam. Jordan Journal Biological Sciences, 2019, 12(7): 43-48.
