فحص كيميائي نباتي ونشاط مضاد لمجرى البول في المختبر لمستخلصات بذور الفاكهة من ميليا أزدارش
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v16i1.1074الكلمات المفتاحية:
ميليا أزداراش، التحليل الكيميائي النباتي، مضاد للجراثيم، فحص التجميع، فحص النواةالملخص
تم استخدام ميليا أزداراش في أنظمة الطب التقليدية لعلاج العديد من الأمراض بما في ذلك تحص بولي. هدفت الدراسة إلى إجراء دراسات كيميائية نباتية وإمكانات مقاومة المسالك البولية لمستخلصات بذور الفاكهة من ميليا أزداراش. تم إجراء الاستخراج المتسلسل باستخدام الكلوروفورم والميثانول والماء. ثم خضعت المستخلصات النباتية لاختبارات كمية لتحليل الكيمياء النباتية. تم التحقيق في نشاط مضاد لمجرى البول عن طريق التنوي في المختبر ومقايسة التجميع باستخدام مقياس الطيف الضوئي. أظهر التحليل الكيميائي النباتي الأولي وجود بروتينات (31.97 ± 0.56٪)، دهون (2.95 ± 0.03٪) وكربوهيدرات (64.90 ± 0.56٪). يحتوي مستخلص الكلوروفورم على أقصى كمية من البوليفينول (77.65 ± 0.53 مجم / جم) والفلافونويد (74.71 ± 0.67 مجم / جم). بتركيز 5 ملغ / مل، أظهر مستخلص الكلوروفورم أقصى نشاط مثبط في كل من التجميع ومقايسة النواة (55.85 ± 1.43٪ ؛ 56.42 ± 4.49٪) على التوالي. أظهرت جميع المستخلصات نشاطا كبيرا في مقاومة المسالك البولية عن طريق تثبيط تبلور أكسالات الكالسيوم. بسبب وجود المستقلبات الأولية والثانوية، يمكن أن يكون النبات بمثابة مصدر للأدوية المفيدة.
المراجع
Dharmalingam S.R., Madhappan R., Chidambaram K., et al. Anti-urolithiatic activity of Melia azedarach Linn leaf extract in ethylene glycol-induced urolithiasis in male albino rats. Trop J Pharm Res, 2014; 13 (3): 391-7.
Manasa Reddy J. P.K., Himabindhu J., Ramanjaneyulu K. Evaluation of in Vitro Antiurolithiatic Activity of Mentha Piperita. Int J Pharm Sci Med, 2018; 10 (5): 1236-1237.
Bahuguna Y., Patil K., Jalalpure SJJoTMP. Phytochemical and Pharmacological Investigation of Melia azedarach Leaves for Antiurolithiatic Activity. J Trop Med Plants, 2008; 9 (2): 344-352.
Butterweck V., Khan S.R.J.P. Herbal medicines in the management of urolithiasis: alternative or complementary? Planta Med, 2009; 75 (10): 1095.
Pareta S.K., Patra K.C., Mazumder P.M., Sasmal D.J.J.P.T. Establishing the principle of herbal therapy for antiurolithiatic activity: A review. J Pharmacol Toxicol, 2011; 6 (3): 321-32.
Abo-El-Sooud K., Hashem M., Eleiwa M.M., et al. Antiurolithiatic activity of edible plants and products. Nat Prod, 2012; 8 (4): 168-174.
Khan A., Bashir S., Khan S.R., et al. medicine a. Antiurolithic activity of Origanum vulgare is mediated through multiple pathways. BMC complementary and alternative medicine, 2011; 11 (1): 1-16.
Vyas B., Vyas R., Joshi S., et al. Antiurolithiatic activity of whole-plant hydroalcoholic extract of Pergularia daemia in rats. J Young Pharm, 2011; 3 (1): 36-40.
Abhirama B., ShanmugaSundaram R.J.P.R., Antiurolithic and antioxidant activity of ethanol extract of whole-plant Biophytum sensitivum (Linn.) DC in Ethylene-Glycol-induced urolithiasis in rats. Pharmacognosy Res, 2018; 10 (2): 181.
Sharma D., Paul Y.J.JoAPS. Preliminary and pharmacological profile of Melia azedarach L.: An overview. J App Pharm Sci, 2013; 3 (12): 133-8.
Jafari S., Saeidnia S., Ardekani M.R.S., Hadjiakhoondi A., Khanavi MJTJoB. Micromorphological and preliminary phytochemical studies of Azadirachta indica and Melia azedarach. Turk J Bot, 2013; 37 (4): 690-7.
Farook M., Mohamed H.M., Tariq N.M., et al. Phytochemical screening, Antibacterial and Antioxidant activity of Melia azedarach. Int J Res Anal Rev, 2019; 6 (2): 248-255.
Ahmed M.F., Rao A.S., Ahemad S.R., et al. Phytochemical studies and antioxidant activity of Melia azedarach Linn leaves by DPPH scavenging assay. Int J Pharm App, 2012; 3 (1): 271-276.
Sen A., Batra A.J.I.J.C.P.R. Evaluation of antimicrobial activity of different solvent extracts of medicinal plant: Melia azedarach L. Int J Curr Pharm Res, 2012; 4 (2): 67-73.
Malar T.J., Antonyswamy J., Vijayaraghavan P. et al. In-vitro phytochemical and pharmacological bio-efficacy studies on Azadirachta indica A. Juss and Melia azedarach Linn for anticancer activity. Saudi J Biol Sci, 2020; 27 (2): 682-8.
Shekhawat K.K., Rao D., Batra A.J.Jof et al. Morphological Overview of Medicinal Plant: Melia azedarach Linn. J Func Environ Botany, 2014; 4 (1): 10-21.
Besbes S., Blecker C., Deroanne C., et al. Date seeds: chemical composition and characteristic profiles of the lipid fraction. Food Chem, 2004; 84 (4): 577-584.
Lowry O.H., Rosebrough N.J., Farr A.L., et al. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J Biol Chem, 1951; 193 (1): 265-75.
Al-Hooti S., Sidhu S., Gabazard H.J.Jofs., technology. Chemical composition of seeds of date fruit cultivars of United Arab Emirates. J Food Sci, 1998; 35 (1): 44-46.
Slinkard K., Singleton V.L.J.Ajoe., viticulture. Total phenol analysis: automation and comparison with manual methods. Am J Enol Vitic, 1977; 28 (1): 49-55.
Pavun L., Uskoković-Marković S., Jelikić-Stankov M., et al. Determination of flavonoids and total polyphenol contents in commercial apple juices. Czech J Food Sci, 2018; 36 (3): 233-8.
Hussain K., Ismail Z., Sadikun A., et al. Analysis of proteins, polysaccharides, glycosaponins contents of Piper sarmentosum Roxb. and anti-TB evaluation for bio-enhancing/interaction effects of leaf extracts with Isoniazid (INH). Nat Prod Rad, 2008; 7 (5): 402-408.
Zarin M.A., Tan J.S., Murugan P., et al. Investigation of potential anti-urolithiatic activity from different types of Musa pseudo-stem extracts in inhibition of calcium oxalate crystallization. BMC Complement, 2020; 20 (1): 1-12.
Dilshad R., Batool R. Antibacterial and Antioxidant Potential of Ziziphus jujube, Fagonia Arabica, Mallotus phillipensis and Hemidesmus Indicus. Jordan J Pharm Sci, 2022; 15 (3): 413-27.
Jemal K., Sandeep B.V., Pola S. Phytochemical screening and in vitro antioxidant activity analysis of leaf and callus extracts of Allophylus serratus (ROXB) KURZ. Jordan J Pharm Sci, 2022; 15 (1): 51-69.
Sumathi AJIJPPSS. Evaluation of physicochemical and phytochemical parameters of Melia Azedarach. Leaves (family: meliaceae). Int J Pharm Pharm Sci, 2013; 2 (5): 104.
Ahmed M.F., Rao A.S., Ahmad S.R., et al. Phytochemical studies and antioxidant activity of Melia azedarach Linn leaves by DPPH scavenging assay. Int J Pharm App, 2012; 3 (1): 271-6.
