الدور الوقائي للانيا كورومانديليكا (هوت.) مير. ضد إفراز وعمل الهستامين: رؤى من التحقيقات في المختبر وفي الجسم الحي
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v17i2.1710الكلمات المفتاحية:
لانيا كورومانديليكا، مضادات الهيستامين، خنازير غينيا، فئران ويستارالملخص
تهدف هذه الدراسة إلى تقييم القدرة المضادة للهستامين للمستخلص النباتي منلانيا كورومانديليكا باستخدام كليهما في المختبر ونماذج على قيد الحياة. في المختبر تمت دراسة التأثيرات المضادة للهستامين باستخدام اللفائفي المعزول لخنزير غينيا لتقييم التأثيرات المثبطة المعتمدة على الجرعة على الانقباضات الناجمة عن الهستامين. تم تقييم كثافة الخلايا البدينة باستخدام نموذج عدد الخلايا البدينة، وحساب متوسط عدد الخلايا البدينة لكل وحدة مساحة في المساريق. لعلى قيد الحياة التقييمات، تم استخدام تشنج قصبي الهستامين الناجم عن الهباء الجوي في نموذج خنزير غينيا، حيث لوحظ أن وقت بداية ضيق التنفس قبل التشنج ((PCD هو وقت ما قبل التشنج (PCT). بالإضافة إلى ذلك، تم استخدام نموذج تحلل الخلايا البدينة الناجم عن الكلونيدين في الفئران، مع تلوين الخلايا باستخدام 1% من التولويدين الأزرق لحساب الخلايا البدينة السليمة والمحببة. اللانيا كورومانديليكا أظهر المستخلص تثبيطًا يعتمد على الجرعة للتقلصات التي يسببها الهستامين في اللفائفي لخنزير غينيا المعزول. وبالمثل، فإن المستخلص يمنع تحلل الخلايا البدينة بطريقة تعتمد على الجرعة، حيث أثبتت جرعة أعلى قدرها 400 ملجم / كجم أنها أكثر فعالية من جرعة أقل قدرها 200 ملجم / كجم. أكدت دراسات السمية الحادة سلامة المستخلص عند تناول جرعات معتدلة، ولم تظهر أي أعراض سمية عند جرعة 2000 ملجم/كجم من وزن الجسم. الأهم من ذلك، أن المستخلص زاد بشكل كبير من معاهدة التعاون بشأن البراءات في خنازير غينيا وخفض النسبة المئوية للخلايا البدينة المعطلة الناجمة عن الكلونيدين. لانيا كورومانديليكا يُظهر خصائص واعدة مضادة للهيستامين، حيث يثبط بشكل فعال التشنج القصبي الناجم عن الهيستامين وتحلل الخلايا البدينة التي يمكن أن تكون خيارًا لتطوير الأدوية المضادة للربو.
المراجع
Quirt J., Hildebrand K.J., Mazza J., et al. Asthma. Allergy Asthma Clin. Immunol. 2018; 14 (Suppl 2): 50. DOI: https://doi.org/10.1186/s13223-018-0279-0
Taur D.J., and Patil R.Y. Some medicinal plants with antiasthmatic potential: a current status. Asian Pac. J. Trop. Biomed. 2011; 1(5):413-8. DOI: https://doi.org/10.1016/S2221-1691(11)60091-9
Javadi B., Sahebkar A., and Emami S.A. Medicinal Plants for the Treatment of Asthma: A Traditional Persian Medicine Perspective. Curr. Pharm. Des. 2017; 23(11):1623-1632. DOI: https://doi.org/10.2174/1381612822666161021143332
Yamauchi K., Ogasawara M. The Role of Histamine in the Pathophysiology of Asthma and the Clinical Efficacy of Antihistamines in Asthma Therapy. Int J Mol Sci. 2019; 20(7):1733. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms20071733
Church MK. Allergy, Histamine and Antihistamines. Handb Exp Pharmacol. 2017; 241:321-331. doi: 10.1007/164_2016_85. DOI: https://doi.org/10.1007/164_2016_85
Bharath Kumar R. Flora of Sacred Groves at Sriharikota Island, Andhra Pradesh, India, Ethnobot. Leafl. 2010; 14: 420.
Mia M. M., Kadir M. F., Hossan M.S., and Rahmatullah M., Medicinal plants of the Garo tribe inhabiting the Madhupur forest region of Bangladesh. Am.-Eurasian J. Sustain. Agric. 2009; 3(2):165.
Alam M.B., Kwon K.R., Lee S.H., and Lee S.H. Lannea coromandelica (Houtt.) Merr. Induces Heme Oxygenase 1 (HO-1) Expression and Reduces Oxidative Stress via the p38/c-Jun N-Terminal Kinase-Nuclear Factor Erythroid 2-Related Factor 2 (p38/JNK-NRF2)-Mediated Antioxidant Pathway. Int. J. Mol. Sci. 8(2):266. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms18020266
Hossain M.J., Biswas S., Shahriar M., Chowdhury M.M., Islam S., Ahsan C.R., and Auther C. Phytochemical screening, antimicrobial activity, antioxidant capacity and in vivo anticancer activity of Lannea coromandelica bark extracts. IOSR J Pharm Biol Sci. 2018; 13(3):19-25.
Isla F., Mitr S., Nafady M.H., Rahman M.T., Tirth V., Akter A., Emran T.B., Mohamed A.A., Algahtani A., and El-Kholy S.S. Neuropharmacological and Antidiabetic Potential of Lannea coromandelica (Houtt.) Merr. Leaves Extract: An Experimental Analysis. Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2022; 28:6144733. DOI: https://doi.org/10.1155/2022/6144733
Ratnam K.V., and Raju R.R.V. Traditional medicine used by the adivasis of eastern ghats, Andhra Pradesh-for bone fractures. Ethnobot. Leafl. 2008; 12:19–22.
Ramadhan A., Herman H., and Sutrisnawati S. Ethanolic extract of Lannea coromandelica stem bark: Histopathology and infiltration of inflammatory cells in the rat's gastric. J. Adv. Pharm. Technol. Res. 2022; 13(4):296-300. DOI: https://doi.org/10.4103/japtr.japtr_475_22
Nuri E., Puspitasari B., Triatmoko D., Dianasari S., Muslichah A. N. Assessment of Extraction Methods Effects on the Biological Activities (Antioxidant and Antiamylase) and Chemistry (Total Phenolics and Flavonoids) of Guazuma ulmifolia Leaves. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024; 17(1):151–162. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i1.1171
Harborne J.B. Phytochemical Methods. Chapman and hall Ltd., London: U.K., 1973; 49-188.
Maslov O., Komisarenko M., Kolisnyk S., Derymedvid L. Evaluation of Anti-Inflammatory, Antioxidant Activities and Molecular Docking Analysis of Rubus idaeus Leaf Extract. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences, 2024; 17(1):105–122. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i1.1808
Ibukun O., Uhunmwangho E.S., Ademola I., Olokor N.D., Akinnaso O. Methanol Leaves Extract of Zingiber officinale (Roscoe) exhibited Anti-Obesity Effect in Wistar Rats Fed with a High Fat Diet. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2023; 16(4):798–814. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v16i4.1128
Dokuparthi S.K., and Reddy T.R.M. Antioxidant and Nephroprotective Activity of Flavonoid Rich Fraction of Alphonsea sclerocarpa Thw. Int. J. Pharm. Sci. Drug. Res. 2021; 13(4):384-394. DOI: https://doi.org/10.25004/IJPSDR.2021.130404
Chedi B.A.Z., and Mandawari F. K. In vitro evaluation of antiasthmatic activity of ethanol leaf extract of Guiera senegalensis j. F. GMEL (Combretaceae). Afr. J. Pharm. Pharmacol. 2018; 12(9): 2. DOI: https://doi.org/10.5897/AJPP2017.4882
Balaji G., Chalamaiah M., Hanumanna P., Vamsikrishna B., Jagadeesh Kumar D., and Venu babu V. Mast cell stabilizing and anti-anaphylactic activity of aqueous extract of green tea (Camellia sinensis). Int. J. Vet. Sci. Med. 2014; 2(1):89–94. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijvsm.2014.03.001
OECD Acute oral toxicity: Up and down procedure Guideline for the Testing of Chemicals, 425, OECD, 2008; 1-2.
Parmar G., Pundarikakshudu K., Balaraman R., and Sailor G. Amelioration of anaphylaxis, mast cell degranulation and bronchospasm by Euphorbia hirta L. extracts in experimental animals. Beni-Suef Univ. J. Basic Appl. Sci. 2017; 7(1):127-134. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bjbas.2017.11.001
Kumar D., Bhujbal S.S., Deoda R.S., and Mudgade S.C. Bronchodilator activity of aqueous extract of stem bark of Ailanthus excelsa Roxb. Pharmacogn. Res. 2010; 2(2):102-6.
Maxia A., Sanna C., Salve B., Kasture A., and Kasture S. Inhibition of histamine mediated responses by Mirabilis jalapa: confirming traditional claims made about antiallergic and antiasthmatic activity. Natural Product Research, 2010; 24(18):1681–1686. DOI: https://doi.org/10.1080/14786410802632804
Venkatesham A., et al. Hypolipidemic activity of Lannea coromandelica Houtt. leaves in Triton X-100 induced hyperlipidemic rats. International Journal of Parallel Programming. 2019; 5:207-210. DOI: https://doi.org/10.18231/2393-9087.2018.0043
Kumar D., Bhujbal S.S., Deoda R.S., and Mudgade S.C. Bronchodilator activity of aqueous extract of stem bark of Ailanthus excelsa Roxb. Pharmacognosy Res. 2010; 2(2):102-6. DOI: https://doi.org/10.4103/0974-8490.62955
Wink M. Modes of Action of Herbal Medicines and Plant Secondary Metabolites. Medicines (Basel). 2015; 2(3):251-286. DOI: https://doi.org/10.3390/medicines2030251
