تأثير التحكم في الخصوبة للأجزاء الهوائية لنبات الفريولا تنجيتانا عن طريق تغيير استجابات محور الوطاء - الغدة النخامية - التناسلية لإناث فئران ويستار
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v15i1.285الكلمات المفتاحية:
موانع الحمل، Ferula tingitana L.، سكر الدم، سيسكيتيربين الكومارينالملخص
تم الإبلاغ عن Ferula tingitana L. لخصائصه المجهضة و/ أو المسببة للحيض. ومع ذلك ، فإن تأثيره في منع الحمل لم يتم تقييمه بشكل متعمد. علاوة على ذلك ، لم يتم تسجيل التنميط الكيميائي الشامل لمستخلصه. عُرفت العديد من أنواع الكيرولا بتأثيرها على إيقاع الإستروجين. أثناء اكتشافنا للعقار من المصادر الطبيعية ، تم اختيار F. tingitana L. النامية في ليبيا لتقييم تأثيرها في منع الحمل. لتقييم التأثيرات الهرمونية والجزيئات النشطة بيولوجيًا لمستخلص الإيثانول F. تم تقسيم إناث الفئران البيضاء البالغة بالتساوي إلى 4 مجموعات (ن = 6). تلقت مجموعة واحدة الماء المقطر لمدة 14 يومًا، وتلقت المجموعات الثانية والثالثة والرابعة المستخلص المختبَر عن طريق الفم بجرعة يومية من 100 و200 و300 مجم / كجم - 1 وزن. لمدة 14 يومًا على التوالي. استمرت الإدارة لمدة 14 يومًا (أسبوعين) في الساعة 9 صباحًا. تم قياس وزن جسم الفئران والرحم. تم صيامهم طوال الليل ثم تخديرهم من خلال التعرض للحمض الغذائي وتم جمع عينات الدم من خلال ثقب العين. تم طرد الدم للحصول على مصل واضح للمقايسة الهرمونية. تم إخضاع المصل بواسطة طريقة ELISA لتقييم مستويات الهرمون المنبه للجريب (FSH) والهرمون اللوتيني (LH) والإستراديول (E2) والبروجسترون (P4). تم قياس التقديرات البيوكيميائية لمستوى الكوليسترول الكلي (TC) ، والدهون الثلاثية (TG) ومستوى الجلوكوز (Glu). تم إجراء GC / MS للملف الشحمي جنبًا إلى جنب مع تحليل HPLC للمحتويات الفينولية. تم إخضاع EtOH وأجزاءه القابلة للذوبان المتتالية للتحليل الكروماتوجرافي. أظهرت النتائج انخفاضًا معنويًا في مستويات FSH وLH وE2 وP4 لإناث فئران ويستار البالغة. لوحظ انخفاض كبير في مستوى المصل الكيميائي الحيوي من TC وTG وGlu. كان داوكول سيسكيتيربين وحمض اللينولينيك وحمض الكافيين والهسبريدين من المكونات النباتية الرئيسية التي تم تحديدها. تم تحديد CC من EtOH الممنوح لـ 5 مركبات على أنها β-sitosterol 1 ، colladonin 2 ، scopoletin 3 ، caffeic acid 4 ، 1- (3،4-dihydroxycinnamoyl) cyclopentane-2` ، 3`-diol 5. استنتج أن sesquiterpene coumarins نظرًا لأن المكونات النباتية الهامة لـ EtOH قد تكشف عن تأثير سلبي على الدورة الشهرية، وإباضة الجريبات وبالتالي قد تضعف الخصوبة. أثبت EtOH تأثيرات سكر الدم ونقص الكولسترول.
المراجع
(1) Birdsall N, Kelley AC and Steven W Sinding, eds. (2001). Population Matters: Demographic Change, Economic Growth, and Poverty in the Developing World. Oxford: Oxford University Press.
(2) Bloom DE and Canning D, "Global Demographic Change: Dimensions and Economic Significance", Population and Development Review vol. 33 (supplement), Population Council, New York, 2008; 17-51
(3) United Nations, Department of Economic and Social Affairs, Population Division,2009. World Population Prospects: The 2008 Revision Population Database. Available from http:// esa.un.org/unpp (accessed 14 July 2010).
(4) Alipour Z, Taheri P, Samadi N. Chemical composition and antibacterial activity of the essential oils from flower, leaf and stem of Ferula cupularis growing wild in Iran. Pharm Biol, 2015;53: 483-487.
(5) Mohammadhosseini M, Mahdavi B, Shahnama M. Chemical composition of essential oils from aerial parts of Ferula gummosa (Apiaceae) in Jajarm Region, Iran using traditional hydrodistillation and solvent-free microwave extraction methods: A comparative approach. J Essent Oil-Bear Pl, 2015;18: 1321-1328.
(6) Mohammadhosseini M, Venditti A, Sarker SD, Nahar L, Akbarzadeh A. The genus Ferula: Ethnobotany, phytochemistry and bioactivities – A review. Ind Crops Prod. 2019; 129: 350-394.
(7) Singh, M., Agnihotri, A., Garg, S., Agarwal, K, S., Gupta, N.D., Keshri, G., Kamboj, P. V.,1989. Antifertility and Hormonal Properties of Certain Carotane Sesquiterpenes of Ferula jaeschkeana. Planta Med., 54,492-494.
(8) Prakash, A., Pathak, S., Shaiv, A., Mathur, R., 1994. oestrogenic rhythm induced by a single administration of the extract of Ferula jaeschkeana to immature rats. Phytother Res., 8, 28-32.
(9) Miski M, Ulubelen A, Mabry TJ, Watson WH, Vickovic I, Holub M, A new sesquiterpene ester from Ferula tingitana.Tetrahedron 1984; 40:5197-5201.
(10) Miski M, Mabry T J. New daucane esters from Ferula tingitana. J Nat Prod, 1986;49:657-660.
(11) Elghwaji W, El-Sayed AM, El-Deeb KS, ElSayed AM. Chemical Composition, Antimicrobial and Antitumor Potentiality of Essential Oil of Ferula tingitana L. Apiaceae Grow in Libya. Pharmacogn Mag. 2017;13 (Suppl3):S446- S451.doi:10.4103/pm.pm_323_15
(12) Vogel A. a textbook of practical organic chemistry, 3rd, english language book society and longman group ltd., London 1975.
(13) Geissman TA, Ollis W, Domínguez X, Deverall B, Dunn A, Arditti J, Guzmán M, Romero R, Rivera G, Mora F. The chemistry of flavonoid compounds, centro regional de ayuda técnica, México, DF (méxico) 1962.
(14) Ivanova V, Stefova M, Chinici F. Determination of the polyphenol contents in Macedonian grapes and vines by standardized spectrophotometric methods. J Serb Chem Soc. 2010;72: 45-49.
(15) Chang C, Yang M, Wen H, Chern J. Estimation of total flavonoid content in propolis by two complementary colorimetric methods. J Food Drug Anal., 2002;10: 178–182.
(16) Goupy P, Hugues M, Boivin P, Amiot J. Antioxidant composition and activity of barley (Hordeum vulgare) and malt extract and of isolated phenolic compounds. J Sci Food Agr. 1999;79: 1625-1634.
(17) Mattila P, Astole J, Kumpulainen J. Determination of flavonoids in plant material by HPLC with diode-array and electro-arraydetections J Sci Food Agric., 2000; 48: 5834-5841
(18) Sakamoto S, Putalun W, Vimolmangkang S, Phoolcharoen W, Shoyama Y, Tanaka H, & Morimoto S. Enzyme-linked immunosorbent assay for the quantitative/qualitative analysis of plant secondary metabolites. J Nat Med, 2018;72(1): 32–42.
doi:10.1007/s11418-017-1144-z
(19) Uotila M, Ruoslahti E, Engvall E. Two-site sandwich enzyme immunoassay with monoclonal antibodies to human alpha-fetoprotein. J. Immunol Methods 1981;42: 11-15.
(20) King E J, Garner, R J. The Colorimetric Determination of Glucose. J clin pathol. 19471;(1);30–33. doi:10.1136/jcp.1.1.30
(21) Henery RJ, Cannon DC, Winkelman JW. Clinical chemistry principles anfd techiness, Bew York;Harper and Row; 1997;.1440.
(22) Fossati P, Principle l. Estimation of the concentration of triglyceride in plasma and liver. Clinical Chemistry, 1982;28: 2077-2081.
(23) Sahebkar A, Iranshahi M Volatile constituents of the genus Ferula (Apiaceae): A review. J Essent Oil Bear Pl., 2011;14:504–531.
(24) Ku C-M, Lin J-Y. Anti-inflammatory effects of 27 selected terpenoid compounds tested through modulating TH1/TH2 cytokine secretion profiles using murine primary splenocytes. Food Chem, 2013; 141: 1104-1113.
(25) Hazar A, Raed A, Nidal J, Motasem M. Evaluation of phytochemical and pharmacological activities of Taraxacum syriacum and Alchemilla arvensis Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences, 2021; 14 (4); 457-473.
(26) Lefahal M, Zaabat N, Ayad R, Makhloufi EH, Djarri L, Benahmed M, Laouer H, Nieto G, Akkal S. In Vitro Assessment of Total Phenolic and Flavonoid Contents, Antioxidant and Photoprotective Activities of Crude Methanolic Extract of Aerial Parts of Capnophyllum peregrinum (L.) Lange (Apiaceae) Growing in Algeria. Medicines (Basel), 2018;5(2): 26.
(27) Goad LJ, Akihisa T. Analysis of sterol. Published by Blackie Academic & Professional, London. 1997.
(28) Abd EL‐Razek M H, Wu Y C, Chang F R. Sesquiterpene coumarins from Ferula foetida. J Chin Chem Soc-TAIP. 2007; 54: 235-238.
(29) Özek G, Özek T, Işcan G, Başer K H C, Duran A. Hamzaoglu EComposition and antimicrobial activity of the oils of Ferula szowitsiana dc. from turkey. J Essent oil Res.2008; 20: 186-190.
(30) Iqra H K, Arshad J.Identification of Biologically Important Compounds In Neem Leaves Through GC-MS Analysis Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences 2021;14(3):359-367.
(31) Jalili-Nik M, Soukhtanloo, M., Javanshir, S., Yazdi, A., Esmaeilizadeh, M., Jafarian, A., Ghorbani, A., 2019. Effects of ethanolic extract of Ferula gummosa oleo-resin in a rat model of streptozotocin-induced diabetes. Res Pharm Sci, 14 (2); 138-145.
(32) Kumar, D., Kumar, A., Prakash, O., 2012. Potential antifertility agents from plants: a comprehensive review. J Ethnopharmacol, 140, 1-32.
(33) Yusufoglu HS, Soliman GA, Abdel-Rahman RF, et al. Antihyperglycemic and antihyperlipidemic effects of Ferula duranii in experimental type 2 diabetic rats. Int J Pharmacol. 2015; 11: 532-541.
(34) Singh R, Kakar S, Shah M, Jain R Some Medicinal Plants with Anti-Fertility Potential: A Current Status; 2018. doi: 10.4103/2278-960X.194512
(35) Ogbuewu I P, Unamba-Oparah I C, Odoemenam V U, Etuk I F, Okoli I C. The potentiality of medicinal plants as the source of new contraceptive principles in males N Am J Med Sci., 2011;3(6): 255–263.
(36) Gopalkrishnan B, Shimpi SN. Antifertility effect of Madhuca latifolia (roxb.) Macbride seed extract. Int J Appl Biol Pharm Tech. 2011;2(4):49-53.
(37) Zade V, Wikhe M, Dabhadkar D, Dawada S, Patil U. Antifertility efficacy of Cannabis sativa leaves on female albino rats. Int J Sci Invent Today.2013; 2(2):107-117.
(38) Nadkarni KM. Indian Materia Medica, Vol. I. Popular Prakashan Pvt. Ltd, Bombay, India. 1976.
(39) Hashimoto I, Isomoto N, Eto M, Kawaminami M, Sunazuka C, Ueki N. preovulatory secretion of progesterone, luteinizing hormone, and prolactin in 4-day and 5-day cycling rats. Biology of Reproduction. 1987;36: 599-605.
(40) AL-Shemary N N A, Mousa S A, Muslim Z Z. Histological and hormonal study about the effect of aqueous extract of ocimum gratissmum on female reproductive system in albino mice. J Pharmaceut Sci Res, 2018;10: 765-767.
(41) Maltaris T, Koelbl H, Seufert R, Kiesewetter F, Beckmann M W, Mueller A, Dittrich R. Gonadal damage, and options for fertility preservation in female and male cancer survivors. Asian J Androl 2006; 8:515-533.
(42) Kalita J, Chakrabarty A, Tanti B. Assessment of Antifertility activity of some traditionally used plants by different ethnic communities in three districts of Assam, India. J. Herbal Med. Toxicol. 2011;5: 65–72.
(43) Singh M, Agnihotri A, Garg S, Agarwal K S, Gupta ND, Keshri G, Kamboj PV. Antifertility and Hormonal Properties of Certain Carotane Sesquiterpenes of Ferula jaeschkeana. Planta Med., 1989;54:492-494.
(44) Chen B, Teranishi R, Kawazoe K, Takaishi Y, Honda G, Itoh M, Takeda Y, Kodzhimatov OK. Sesquiterpenoids from Ferula kuhistanica. Phytochemistry 2000; 54: 717-722.
(45) Rincon-Cervera M A, Valenzuela R, Hernandez-Rodas MC, Barrera C, Espinosa E, Marambio, M, Valenzuela A. Vegetable oils rich in alpha linolenic acid increment hepatic n-3 LCPUFA, modulating the fatty acid metabolism and antioxidant response in rats. Prostaglandins Leukot Essent Fatty Acids 2016; 111: 25-35.
