دراسة عن الفعالية المضادة للبكتيريا لمستخلصات مختلفة من ثمار Artocarpus chama وتحديد المركبات النشطة بيولوجيًا في أقوى المستخلصات
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v15i1.293الكلمات المفتاحية:
Artocarpus chama، مبيد الجراثيم، الحد الأدنى للتركيز، تحليل FT-IR، تحليل GC-MSالملخص
صممت هذه الدراسة لتقييم القدرة المضادة للبكتيريا لمستخلصات مختلفة من الثمار الخضراء الناضجة من Artocarpus chama مع تحديد المركبات النشطة بيولوجيا. تم اختبار الفعالية المضادة للبكتيريا ضد ثمانية أنواع من البكتيريا المسببة للأمراض باستخدام المضادات الحيوية القياسية كعنصر تحكم إيجابي. تم إجراء اختبار حيوي مضاد للبكتيريا عن طريق قياس منطقة التثبيط ، والتركيزات المثبطة الدنيا (MIC) ، والتركيزات الدنيا للجراثيم (MBC). تم إخضاع المستخلص الأكثر فعالية لاختبارات كيميائية نباتية أولية ، كروماتوجرافيا الطبقة الرقيقة (TLC) ، وتحليل فورييه لتحويل الأشعة تحت الحمراء. تم العثور على مستخلص أسيتات الإيثيل (EAAC) ليكون المستخلص الأكثر فاعلية في إنتاج منطقة تثبيط تبلغ 45.50 ± 0.50 مم ضد Pseudomonas aeruginosa MTCC 2453. تعرضت البقع الفعالة (ES) (Rf = 0.37) من EAAC المفصولة عن طريق تحليل TLC للتصوير الذاتي الحيوي للتلامس غير المباشر لتقييم كفاءتها ضد السلالات البكتيرية المختبرة. تراوحت قيم MBC / MIC للمستخلص من 1.20 إلى 1.80 (<2) مما يشير إلى خصائصها القاتلة للجراثيم. تم إجراء التحليل اللوني للغاز - التحليل الطيفي للكتلة ES لتحديد المركبات المضادة للبكتيريا النشطة بيولوجيًا. تم الكشف عن القلويات ، الصابونين ، المنشطات ، التربينويدات ، ومجموعة من المجموعات الوظيفية في EAAC. تراوحت MICs من ES من 6-10 ميكروغرام / مل. تم الكشف عن أربعة مركبات نشطة بيولوجيا في ES في تحليل GC-MS. وهكذا أوضحت هذه الدراسة أن مستخلص أسيتات الإيثيل من ثمار A. chama يحتوي على العديد من المركبات النشطة بيولوجيا ذات الخصائص الواعدة للجراثيم ضد السلالات المختبرة من البكتيريا المسببة للأمراض موجبة الجرام وسالبة الجرام.
المراجع
De assis F.V., Siqueira F.L., Gonçalves I.E., Lacerda R.P., Rafaela A., Nascimento R.A., Araújo S.G., Andrade J.T., Herrera K.M.S., Lima L. and Ferreira J.M.S. Antibacterial activity of Lamiaceae plant extracts in clinical isolates of multidrug-resistant bacteria. An. Acad. Bras. Ciênc. 2018; 90(2):1665-1670.https://doi: 10.1590/0001-3765201820160870.
Bhattacharjee I., Chatterjee S.K., Ghosh A. and Chandra G. Antibacterial activities of some plant extracts used in Indian traditional folk medicine. Asian Pac. J. Trop. Biomed. 2011; S165-S169.
Manandhar S., Shisir S.L. and Dahal R.K. In Vitro Antimicrobial Activity of Some Medicinal Plants against Human Pathogenic Bacteria. J. Trop. Med. 2019;1-5. https://doi.org/10.1155/2019/1895340.
Winston J.C. Health-promoting properties of common herbs. Am. J. Clin. Nutr.1999; 70: 491-99. https://doi:10.1093/ajcn/70.3.491s.
Mahasneh AM and Al-Hussaini R. Antibacterial and antifungal activity of ethanol extract of different parts of medicinal plants in Jordan. Jordan J. Pharm. Sci. 2011;108(397):1-26.
Shalayel M.H.F., Asaad A.M., Qureshi M.A. and Elhussein A.B. Anti-bacterial activity of peppermint (Mentha piperita) extracts against some emerging multi-drug resistant human bacterial pathogens. J. Herb. Med. 2017; 27-30.
https://doi.org/10.1177/1934578X1801300832.
Burman S., Bhattacharya K., Mukherjee D. and Chandra, G. Antibacterial efficacy of leaf extracts of Combretum album Pers. against some pathogenic bacteria. BMC Complement. Altern. Med., 2018; 18:213-220. https://doi: 10.1186/s12906-018-2271-0.
Shadid K.A., Al-Lahham S., Jaradat N., Abu-Nameh E.S. and Qaisi A.M. Preliminary Phytochemical Screening, Antioxidant and Antimicrobial Activities of the Aqueous, Methanol, Acetone, and Hexane Fractions of Centaurea cyanoides Wahlenb. Jordan J. Pharm. Sci. 2019; 12(1):21-32.
Castello M., Pathak A., Chandra N. and Sharon M. Antimicrobial activity of crude extract from plant parts and corresponding calli of Bixa orellana L. Indian J. Exp. Biol. 2002; 40: 1378-1381.
Bhattachajee I., Ghosh A. and Chandra G. Antimicrobial activity of the essential oil of Cestrum diurnum (L.)(Solanales: Solanaceae). Afr. J. Biotechnol. 2005; S(4):371-374.
Hostettman K., Wolfender J. and Christian T. Modern Screening Techniques for Plant Extracts. Pharm. Biol. 2001; 39 (Suppl):18-32.
https://doi: 10.1076/phbi.39.s1.18.0008.
http://www.theplantlist.org/tpl1.1/record/kew-2653946 (accessed 25 July, 2020).
Talukder B., Hossain M.D.F., Mubarok R.U., Absar N., Hossain M.S., Nipun T.S. and Hossain, S.M.M. In Vitro Antioxidant and Thrombolytic Activity of Artocarpus chaplasha Leaves. Der. Pharma. Chem. 2017; 9(3):85-91.
Chowdhury F., Pal S., Sharmin T., Rashid R.B., Sikder M.M.A., Kabir S., Rahman M.S. and Rashid M. Bioactivities of Artocarpus chaplasha Roxb. and Bougainvillea spectabillis Willd. Bangladesh Pharm. J., 2013; 16(1):6368.
https://doi.org/10.3329/bpj.v16i1.14493.
Paul S. and Sikdar D. Assessment of total phenolic content, anti-oxidant and anti-alphaamylase activities in Borassus fabellifer, Spondias pinnata , Syzygium samrangense, Carissa carandus, Artocarpus chaplasha and Averrhoa carambolas. Biochem. Indian J. 2011; 5(5): 316-322.
Ahmed T., Nasir Uddin M., Ahmed S.F., Saha A., Farhana K. and Rana M.S. In vitro evaluation of antioxidant potential of Artocarpus chama Buch. fruits. J. Appl. Pharm. Sci. 2012; 2(10): 075-080. https://doi: 10.7324/JAPS.2012.21015.
Perez C., Pauli M. and Bazerque, P. Antibiotic assay by agar-well diffusion method. Acta Biol. Med. Exp. 199; 15:113-115.
Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically; Approved Standard-Eighth Edition. CLSI document M07-A8. Wayne, PA, USA: Clinical Laboratory Standards Institute, 2009.
Ha M.H., Nguyen V.T., Nguyen K.Q.C.; Cheah E.L.C. and Heng P.W.S. Antimicrobial activity of Calophyllum inophyllum crude extracts obtained by pressurized liquid extraction. Asian J. Tradit. Med. 2009; 4 (4):141-146.
CLSI. Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests; Approved standard- 12th Edition. CLSI document M02 A12. Wayne, PA: Clinical and Laboratory Standard Institute, 2015.
Harborne J.B. Phytochemistry. 4th eds. Academic Press: London. 199; p 89-131.
Sofowora A. Medicinal plants and medicine in Africa. Spectrum Books Ltd Ibadan. 1993; p150-153.
Evans W.C. Trease and Evans pharmacognosy. 15th eds. Elsevier India Private Limited. Noida.2008; 3-4.
Dewanjee S., Gangopadhyay M., Bhattacharya N., Khanra R. and Dua T.K. Bioautography and its scope in the field of natural product chemistry. J. Pharm. Anal. 2015;5(2):75-84. https://doi.org/10.1016/j.jpha.2014.06.002.
Ghosh A., Das B.K., Chatterjee S.K. and Chandra G. Antibacterial potentiality and phytochemical analysis of mature leaves of Polyalthia longifolia (Magnoliales: Annonaceae). SPJNS. 2008; 26, 68-72.
Mehta S., Singh R.P. and Saklani P. Phytochemical Screening and TLC profiling of Various Extracts of Reinwardtia indica. Int. J. Pharmacogn. Phytochem. Res. 2017; 4:523-527.
https://doi.org/10.25258/phyto.v9i4.8125.
Dhawan D. and Gupta G. Comparison of different solvents for phytochemical extraction potential from Datura metel plant leaves. Int. J. Biol. Chem. 2017;11(1):17-22. doi: 10.3923/ijbc.2017.17.22.
Rokade Y.B., Sayyed R.Z. and Rasayan J. Naphthalene derivatives: A new range of antimicrobials with high therapeutic value. Rasayan J. Chem. 2009; 2(4):972-980.
Banu G.S., Kumar G., Umamagesh P. and Karthikeyan S. Evaluation of the Antimicrobial Activity of Saponins Extract of Trianthema portulacastrum. International J. Pharma. Sci. Nanotechnol. 2009; 2(3):667-70.
Gurrapu S. and Mamidala E. In vitro antibacterial activity of alkaloids isolated from leaves of Eclipta alba against human pathogenic bacteria. Pharmacogn. J. 2017; 9(4):573-577. https://doi: 10.5530/pj.2017.4.91.
Selvamangai C. and Bhaskar A. Analysis of phytocomponents in the methanolic extract of Eupatorium triplinerve by GCMS method. Int. J. Drug Dev. Res. 2013; 5(1):384-391.
Selvamangai G. and Bhaskar A. GC-MS analysis of phytocomponents in the methanolic extract of Eupatorium triplinerve. Asian Pac. J. of Trop. Bio., 2012; S1329-S1332.
