التأثيرات التآزرية لمستخلص أوراق النيم مع المضاد الحيوي التقليدي ضد الكائنات الدقيقة الإيجابية والسلبية للجرام
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v15i2.325الكلمات المفتاحية:
نيم، الكائنات الحية الدقيقة، مضاد للجراثيم، تأثير تآزري مضادات حيويةالملخص
الخلفية: من المعروف أن النيم يمتلك العديد من المكونات النباتية المعقدة ويعرض مجموعة واسعة من الاستخدامات الطبية والمنزلية التي تُعزى إلى العزلة (العزلات) النشطة التي تمتلك القدرة على علاج العديد من الأمراض المزمنة والاضطرابات (الاضطرابات). هدفت الدراسة الحالية إلى دراسة التأثير المشترك المضاد للميكروبات لمستخلص النيم الخام والمضادات الحيوية المختارة مثل سيبروفلوكساسين، سيفيكسيم، كلورامفينيكول، أمبيسلين، سلفاميثوكسازول، تتراسيكلين وأوفلوكساسين على الكائنات الدقيقة الإيجابية والسلبية للجرام المختار. تم استخدام مستخلص أوراق النيم الكحولي الخام للدراسة.
الطريقة: المحلول أ يحتوي على مستخلص النيم 5 مجم مل 1 وحده، المحلول ب يتكون من المضادات الحيوية القياسية وحدها 5 مجم مل 1 ومحلول ج الذي يحتوي على توليفة من 2.5 مجم مل من مستخلص النيم ومضاد حيوي معياري محدد بتركيز 2.5 مجم تم اختبار mL-1 من حيث قدرتها المضادة للبكتيريا ضد سلالة مختارة من الكائنات الدقيقة مثل Klebsiella pneumoniae و Staphylococcous aureus و Pseudomonas aeruginosa و E. coli و Bacillus subtilis باستخدام تقنية لوحة أجار.
النتائج: أشارت النتائج المتحصل عليها إلى الفعالية التآزرية لمستخلص النيم والمضادات الحيوية المختارة. لوحظ أن نصف تركيز المضاد الحيوي كان كافياً لممارسة التأثير المضاد للميكروبات عند مزجها مع مستخلص النيم. وبالتالي، قد يتم تقليل جرعة المضادات الحيوية القياسية بشكل هامشي إلى النصف تقريبًا في التركيز عند دمجها مع مستخلص النيم دون المساس بالفعالية. أشارت مناطق التثبيط إلى أن الجمع بين مستخلص النيم والمضاد الحيوي لهما تأثير تآزري يسهل تحقيق خفض جرعة المضادات الحيوية القياسية.
الاستنتاجات: يمكن الاستنتاج من البحث أن مستخلص النيم عند دمجه مع المضادات الحيوية التقليدية يمكن استخدامه كعامل مضاد للميكروبات جديد له تأثير تآزري ومفيد أيضًا في تحقيق تقليل جرعة المضادات الحيوية التقليدية.
المراجع
Margaret A.A., Investigation of the Synergistic Effects of the Extract of Neem Tree and Caffeine on the Promoter Activity of Cyp6a8 in Drosophila melanogaster, University of Tennessee Honors Thesis Projects. https://trace.tennessee.edu/utk_chanhonoproj/1041, 2007.
Asimuddin M., Shaik M.R., Adil S.F., Siddiqui M.R.H., Alwarthan A., Jamil K. and Khan M. Azadirachta Indica Based Biosynthesis of Silver Nanoparticles and Evaluation of their Antibacterial and Cytotoxic Effects. J King Saud Univ Sci 2020;32:648-656. https://doi.org/10.1016/j.jksus.2018.09.014
Govindachari T.R., Suresh G., Gopalakrishnan G., Banumathy B. and Masilamani S. Identification of antifungal compounds from the seed oil of Azadirachta indica. Phytoparasitica 1998;26:109–116.
Alzohairy M.A. Therapeutics Role of Azadirachta indica (Neem) and Their Active Constituents in Diseases Prevention and Treatment. Evid Based Complement Alternat Med 2016;7382506.
https://doi.org/10.1155/2016/7382506
Mahfuzul H.M.D., Bari M.L., Inatsu Y., Juneja V.K. and Kawamoto S. Antibacterial activity of guava (Psidium guajava L.) and neem (Azadirachta indica A. Juss.) extracts against foodborne pathogens and spoilage bacteria. Foodborne Pathog Dis 2007;4:481–488. DOI: 10.1089/fpd.2007.0040
Bhinge S.D., Malipatil S.M., Sonawane L.V. and Hariprasanna R.C. Simultaneous Estimation of Cefixime And Cloxacillin In Bulk And Tablet Formulation By RP-HPLC Method. Indian Drugs 2012;49:23-29.
Bhinge S.D., Malipatil S.M. and Sonawane L.V. Bioanalytical Method Development and Validation for Simultaneous Estimation of Cefixime and Dicloxacillin by RP-HPLC in Human Plasma. Acta Chim Slov 2014;61:580–586.
Bhinge S.D., Malipatil S.M., Sonawane L.V. and Hariprasanna R.C. Simultaneous Estimation of Cefixime and Dicloxacillin in Bulk and Tablet Formulation by RP-HPLC Method. FABAD J Pharm Sci 2012;37:63-71.
Bhinge S.D., Malipatil S.M. and Sonawane L.V. Simultaneous estimation of cefixime and cloxacillin in human plasma by reversed phase-HPLC with UV detection. Thai J Pharm Sci 2012;36:63-71.
Chopra I. and Roberts M. Tetracycline Antibiotics: Mode of Action, Applications, Molecular Biology, and Epidemiology of Bacterial Resistance. Microbiol Mol Biol Rev 2001;65:232–260.
Drusano G.L., Standiford H.C. and Plaisance K. Absolute oral bioavailability of ciprofloxacin. Agents Chemother 1986;30:444–446.
Maestrelli F., Jug M., Cirri M., Kosalec I. and Mura P. Characterization and microbiological evaluation of chitosan-alginate microspheres for cefixime vaginal administration. Carbohydr Polym 2018;192:176-183. doi: 10.1016/j.carbpol.2018.03.054
Ozcan K., Uzelb A. and Bedir E. Anti-Microbial Activity of Chloramphenicol from Streptomyces sp.10CM9. Procedia - Social and Behavioral Sciences 2015;195:1736–1739.
Sato K., Inoue Y., Fujii T., Aoyama H. and Mitsuhashi S. Antibacterial activity of ofloxacin and its mode of action. Infection 1986;14:S226-230.
Shib A.M. Antibacterial activity of ampicillin alone and in combination with sulbactam: Correlation with beta-lactamase production. Curr Ther Res 1994;55:1304-1309.
Zandera J., Besiera S., Faetkea S., Saumb S.H., Müller V. and Wichelhaus T.A. Antimicrobial activities of trimethoprim/sulfamethoxazole, 5-iodo-2′-deoxyuridine and rifampicin against Staphylococcus aureus. Int J Antimicrob Ag 2010;36:562-565.
Koppen B.C., Mulder P.P.G., Boer L.D., Riool M., Drijfhout J.W. and Zaat S.A.J. Synergistic Microbicidal Effect of Cationic Antimicrobial Pep-tides and Teicoplanin against Planktonic and BioÞlm-Encased Staphylococcus aureus. Int J Antimicrob Ag 2019;53:143-151. doi: 10.1016/j.ijantimicag.2018.10.002
Richard P. 2015 EAHP survey: managers urged to support systems to reduce medication errors. Eur J Hosp Pharm 2015;23:245–247. doi: 10.1136/ejhpharm-2016-001014
Randive D.S., Bhinge S.D., Sayyad S.F. and Wadkar G.H. Comparative Standardization of Marketed Formulations of Fermented Biomedicine – Arjunaristha. Indonesian J Pharm 2016;27:220-225.
Rajesh T., Roy A.K., Erumalla V.N.R., Goli D. and Basha S.J. Development and evaluation of antimicrobial ointment formulation contain-ing extracts of Ocimum sanctum, Anthocephalus cadamba, Allium sativum and Origanum vulgare. World J Pharm Res 2014;3:398-422.
Bhinge S.D., Bhutkar M.A., Randive D.S., Wadkar G.H. and Todkar S.S. Development and evaluation of antimicrobial polyherbal gel. Annal Pharm Fr 2017;75:349-358. doi: 10.1016/j.pharma.2017.04.006.
Brooks B.D. and Brooks A.E. Therapeutic strategies to combat antibiotic resistance. Adv Drug Deliv Rev 2014;78:14–27. doi: 10.1016/j.addr.2014.10.027
Ababneh M. A., Issa N. and Alkhatatbeh M. Evaluation of Core Elements of Antimicrobial Stewardship Programs in Jordanian Hospitals, Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences, 2017;10(2), 127-134.
Antão E.M., Wagner-Ahlfs, C. Antibiotic resistance: A challenge for society. Bundesgesundheitsblatt Gesundheitsforschung Gesundheitsschutz 2018; 61: 499-506. doi: 10.1007/s00103-018-2726-y
Bhinge S., Bhutkar M., Randive D., Wadkar G. and Todkar S. Investigation of the synergistic effects of the extract of neem with conventional antibiotic against gram positive and gram negative microorganism. Int J Infect Dis 2020;101:16.
https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.09.080.
Bhinge S., Bhutkar M., Randive D., Wadkar G. and Todkar S. Synergistic effects of synthesized iron nanoparticles of neem extract with conventional antibiotic against gram positive negative microorganism. Int J Infect Dis 2020;101:16.
https://doi.org/10.1016/j.ijid.2020.09.158
Ali H., Alkowni R., Jaradat N. and Masri M. Evaluation of phytochemical and pharmacological activities of Taraxacum syriacum and Alchemilla arvensis, Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences, Volume 14, No. 4, 2021, 457-472,
Ismed F., Putra H. E., Arifa N. and Putra D. P. Phytochemical profiling and antibacterial activities of extracts from five species of Sumatran lichen genus Stereocaulon. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences, 2021;14(2):189-202.
