النشاط المضاد للبكتيريا للمواد الكيميائية النباتية في أوراق Ficus thonningii المستخلصات ضد بعض البكتيريا المسببة للأمراض المنتشرة في فقر الدم المنجلي
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v16i2.344الكلمات المفتاحية:
مضاد للجراثيم، اللبخ thonningii، الالتهابات، فقر الدم المنجلي، الطب العرقيالملخص
تحدث فقر الدم المنجلي عن طفرة نقطية تتضمن استبدال حمض الغلوتاميك بالفالين، والسبب السريري لهذا هو أن مرضى SCA يعانون من نقص المناعة، وبالتالي يكونون عرضة للعدوى البكتيرية. الإشريكية القولونية، كليبسيلا. الرئوية، السالمونيلا التيفية، العقدية الرئوية والمكورات العنقودية الذهبية هي بعض البكتيريا المرتبطة بـ SCA. هنا قمنا بالتحقيق في النشاط المضاد للبكتيريا لمستخلصات أوراق Ficus thonningii التي يستخدمها ممارسو الطب العرقي في إدارة العدوى في مرضىSCA. تم تحديد النشاط المضاد للميكروبات بناءً على متوسط قطر منطقة التثبيط AVDZI))، والتركيز المثبط الأدنىMIC) ) والحد الأدنى لتركيز مبيد الجراثيم(MBC) بينما، بنية المركبات FTH1 (Bergapten)،FTH2 حمض Protocatechuic) وFTH3) ميثيلferulate ) ) بناءً على تحليل الرنين المغناطيسي النوويNMR). ) أشارت النتائج إلى أن المستخلصات الخام للميثانول(MCE) والهكسانHCE) ) والكلوروفورم CCE)) وميثانول الماء MWCE) ) تحتوي على AVDZI بمقدار ≥ 12.1 ± 0.12 مم، ≥ 11.0 ± 0.00 مم، ≥ 10.2 ± 0.25 مم و ≥ 12.1 ± 0.21 ملم على التوالي بينما كان للمركبات المعزولة FTH1 و FTH2 و FTH3 AVDZI بمقدار ≥ 10.1 ± 0.10 ملم، ≥ 9.1 ± 0.12 ملم، 7.1 ± 0.24 ملم على التوالي. تم اختبار نتائج AVDZI من أجل الدلالة الإحصائية باستخدام اختبار ANOVA أحادي الاتجاه واختبار Tukey Posthoc، واعتبرت مهمة عند
p <0.05. تشير النتائج التي توصلنا إليها إلى أن مستخلصات أوراق F. thonningii بما في ذلك المركبات المعزولة منها هي عامل مضاد للجراثيم محتمل وتبرر استخدامها كعلاج وقائي مضاد للبكتيريا في إدارة العدوى في مرضى SCA من قبل الأشخاص العرقيين في نيجيريا.
المراجع
Booth C., Inusa B. and Obaro S. K. Infection in sickle cell disease: A review. Int. J. Infect. Dis. 2010; 14(1):e2-e12.
Atkins B. L., Price E. H., Tillyer L., Novelli V. and Evans J. Salmonella osteomyelitis in sickle cell disease children in the East End of London. J. Infect. 1997; 34(2):133-138
Win N. Blood transfusion therapy for haemoglobinopathies; In: Okpala I, editor. Practical management of haemoglobinopathies. Blackwell Publishing limited, New Jersey. 2004, pp99-106.
Vichinsky E. P., Neumayr L. D., Earles A. N., Williams R., Lennette E. T., Dean D., Nickerson B., Orringer E., Mckie V., Bellevue R., Daeschner C., Abboud M., Moncino M., Ballas S., Ware R. and Manci E. A. Causes and outcomes of the acute chest syndrome in sickle cell disease. National Acute Chest Syndrome Study Group. N. Engl. J. Med. 2000; 342(25): 1855—1865.
Stuart M. J. and Nigel R. L. “Sickle-cell disease,” Lancet. 2004; 364(9442): 1343—1360.
Neumayr L., Lennette E., Kelly D., Earles A., Embury S., Groncy P., Grossi M., Grover R., Mcmahon L., Swerdlow P., Waldron P. and Vichinsky E. Mycoplasma disease and acute chest syndrome in sickle cell disease. Pediatr. 2003; 112(1): pt1, 87-95.
Frenette P. S. and Atweh G. F. Sickle cell disease: old discoveries, new concepts and future promise. J. Clin. Investig. 2007; 117: 850-858.
Dick M. Sickle cell disease in childhood. Standards and guidelines for clinical care. NHS Sickle cell and thalassemia screening programme. 2010, pp1-53
Hirst C. and Owusu-Ofori S. Prophylactic antibiotics for preventing pneumococcal infection in children with sickle cell disease. Cochrane Database Syst Rev., 2002; 3: CD003427
Reynolds R., Potz N., Colman M., Williams A., Livermore D. and MacGowan A. BSAC Extended Working Party on Bacteremia Resistance Surveillance. Antimicrobial sensitivity of the pathogens of bacteremia in the UK and Ireland 2001-2: the BSAC Bacteremia Resistance Surveillance Programme. J. Antimicrob. Chemother. 2004; 53:1018—1032.
Ochocinski D., Dalal M., Black V. L., Carr S., Lew J., Sullivan K. and Kissoon N. Life threatening Infectious Complications in Sickle cell Disease: A concise Narrative Review. Front Pediatr. 2020; 8(38): 1-22
Roskov Y., Ower G., Orrell T., Nicolson D., Bailly N., Kirk P. M., Bourgoin T., Dewalt R. E., Decock W., Nieukerken E. and Penev L. Specie 2000. Naturalis, Leiden, the Netherland, 2020.
Global Biodiversity Information Facility Secretariat. Ficus thonningii Blume. GBIF Backbone Taxonomy. Checklist dataset, 2019. [online]. Available: https://hosted-datasets.gbif.org/datasets/backbone/
Harborne J. B. Phytochemical Methods- A guide to modern Techniques of plant analysis. 3rd edition, Chapman and Hall, London, 1988, pp.1-230.
Adeniyi B. A., Odelola H. A. and Oso B. A. Antimicrobial potential of Diospyros mesiliforus (Ebenaceae). Afr. J. Med. Med Sci. 1996; 25(3):221-224.
Cheesbrough M. Antimicrobial susceptibility testing. District Laboratory Practice in tropical countries part 2, 2nd edition, Cambridge University press, United Kingdom, 2000, pp. 132-143.
Esimone C. O., Adikwu M. U. and Okonta J. M. Preliminary antimicrobial screening of ethanolic extract from the lichen Usnea subfloridans (L). J. Pharm. Res. Dev. 1998; 3(2): 99-101.
Adebayo E. A., Ishola O. R., Taiwo O. S., Majolagbe O. N. and Adekeye B. T. Evaluations of the methanol extract of Ficus exasperata stem bark, leaf and root for phytochemical analysis and antimicrobial activities. Afr. J. Plant Sci. 2009; 3(12): 283-287.
Chavan M. C., Navratne A. R., Patil R. B., Vanjari S. S. and Khandelwal K. R. Development and validation of stability indicating high performance thin layer chromatography method for analysis of Bergapten. J. Pharm. Sci. Res. 2019; 11(9):3237-3242.
Chunyan C., Bo S., Ping L., Jingmei L. and Ito Y. Isolation and purification of psoralen and bergapten from Ficus carica l leaves by high-speed countercurrent chromatography. J. Liq. Chromatogr. Relat. Technol. 2009; 32(1):136–143
Liu R., Feng L., Sun A. and Kong L. Preparative isolation and purification of coumarins from Cnidium monnieri (L.) Cusson by high-speed counter-current chromatography. J. Chromatogr. A. 2004; 20014(1005): 71–76.
Sahil K. and Souravh B. A. Review of protocatechuic acid and its pharmacological potential. Int. Sch. Res. Notices. 2014; 12(952943).
Benahmed M., Akkal S., Elomri A., Laouer H., Verite P. and Seguin E. Constituents from Bulpleurum montanum (Coss and Dur) (Apiaceae). Arabian J. Chem. 2011; 1-5.
Ijoma K. I. and Ajiwe V. I. E. Methyl ferulate induced conformational changes on DeOxyHbS: Implication on sickle erythrocyte polymerization. Mediterr. J. Chem. 2022; 12(1):100-111
Madeiro A. L., Borges H. P. B., Souto A. L., Figueiredo T. R., Siqueira-Junior J. P. and Tavares J. F. Modulation of the antibiotic activity against multidrug resistant strains of coumarins isolated from Rutaceae species. Microb. pathog. 2017; 104:151-154
Quetglas-Llabres M. M., Quipe C., Herrera-Bravo J., Catarino M. D., Pereira O. R., Cardoso S. M., Dua K., Chellappan D. K., Pabreja K., Satija S., Mehta M., Sureda A., Martorell M., Satmbekova D., Yeskaliyeva B., Sharifi-Rad J., Rasool N., Butnariu M., Bagiu C. J, Bagiu R. V, Calina D. and Cho W. C. Pharmacological properties of bergapten: mechanistic and therapeutic aspects. Oxid. Med. Cell. Longev. 2022; 8615242: 1-10.
Semaming Y., Pannengpetch P., Chattipakorn S. C. and Chattipakorn N. Pharmacological properties of protocatechuic acid and its potential roles as complementary medicine. Evid-Based. Complement. Altern. Med. 2015; 593902: 1-11.
Li T., Shen Y., Chen H., Xu Y., Wang D., Cui F., Han Y. and Li J. Antimicrobial properties of coaxial spinning membrane of methyl ferulate/zein and its preservation effects on Sea Bass. Foods. 2021; 10(10): 2385, 1-15.
Wang W., Sun Q., Gan N., Zhai Y., Xiang H. and Li H. Characterizing the interaction between methyl Ferulate and human serum albumin by saturation transfer difference NMR. RSC. Adv. 2020; 10(54): 32999-33009.
Ijoma K. I. and Ajiwe V. I. E. Jatropha tanjorensis a flora of Southeast Nigeria: Isolation and Characterization of naringenin and validation of bio-enhanced synergistical activity of α-tocopherol toward clinical isolates of resistant bacterial. Makara J. Sci. 2022; 26(2): 120-127
Dangarembizi R., Erlwanger K. H., Moyo D. and Chivandi E. Phytochemistry, Pharmacology and Ethnomedicinal uses of Ficus thonningii (blume moraceae): A Review. Afr. J. Tradit. Complement. Altern. Med. 2013; 10(2): 203-212
Cousins O. N. and Michael A. H. Medicinal properties in the diet of Gorillas. An ethno-pharmacological evaluation,” Afr. Study Monogr. 2002; 23(2): 65-89
Barret-Connor E. Bacterial infection and sickle cell anaemia. Medicine (Baltimore). 1971; 50(2): 97-112.
Powars D., Overturf G. and Turner E. Is there an increased risk of Haemophilus influenzae septicemia in children with sickle cell anemia? Pediatr. 1983; 71(6): 927–931
Wright J., Thomas P. and Serjeant G. R. Septicemia caused by salmonella infection: an overlooked complication of sickle cell disease. J. Pediatr. 1997; 130(3): 394–399.
Amyes S. Antimicrobial chemotherapy: Pocketbook. Chemical Rubber Company Press, Florida, USA, 1996, p25
French G. L. Bactericidal agents in the treatment of MRSA infections-the potential role of daptomycin. J. Antimicrob. Chemother. 2006; 58(6): 1107-1117
Alima Yanda A. N, Nansseu J. R., Awa H. D., Tatah S. A., Seungue J., Eposse C. and Koki P. O. Burden and spectrum of bacterial infections among sickle cell disease children living in Cameroon. BMC. Infect. Dis. 2017; 17(21): 1-7.
Sowndhariya, S., Ravi, S., Dharani, J. and Sripathi, R. Chemical constitution, in silico molecular docking studies and antibacterial activity of flower essential oil of Artabotrys hexapetalus. Jordan J. Pharm. Sci. 2022; 15(3):341-354.
Mbang, N.F., Olutayo, A.A., Lateef, G.B., Oluyemisi, A.B., Florence, O.O., Olufunke, C.B. and Khalidat, O.O. Evaluation of the antimicrobial activity of Strombosia grandifolia Hook f.ex Benth extract hand sanitizer formulation. Jordan J. Pharm. Sci. 16(1):61-71.
