يمتلك المستخلص والكسور من بكتيريا التربة (Streptomyces canus ATCC 12647) إمكانات مضادات الميكروبات ومضادات الأكسدة في المختبر

المؤلفون

  • Kelvin Ejiofor Odo جامعة نيجيريا نسوكا ، ولاية إينوجو، نيجيريا.
  • Matthias Onyebuchi Agbo جامعة نيجيريا نسوكا ، ولاية إينوجو، نيجيريا
  • Patience Ogoamaka Osadebe جامعة نيجيريا نسوكا ، ولاية إينوجو، نيجيريا.

DOI:

https://doi.org/10.35516/jjps.v15i3.416

الكلمات المفتاحية:

Streptomyces canus، مضادات الميكروبات، مضادات الأكسدة، المنتجات الطبيعية، الأمراض المعدية

الملخص

أنواع Streptomyces هي أكثر منتجي المضادات الحيوية غزارة ضمن مجموعة البكتيريا الشعاعية. تم تقييم أنشطة مضادات الميكروبات ومضادات الأكسدة في المختبر لمستخلص الميثانول (MeOH) وأجزاء الكروماتوجرافيا السائلة الفراغية (VLC) لبكتيريا التربة Streptomyces canus ATCC 12647. تم استخدام طريقة آجار لنشر البئر لفحص مضادات الميكروبات، بينما تم استخدام طرق الكسح الجذري للفوسفوموليبدات و DPPH لفحص مضادات الأكسدة. أظهر اختبار مضادات الميكروبات أنشطة ملحوظة ضد Bacillus subtilis و Staphylococcus aureus و Candida albicans. كما أظهر المستخلص والكسور أنشطة جيدة لمضادات الأكسدة في المختبر في كلا النموذجين. أظهرت نتائجنا أن مستخلص و VLC من العزلة البكتيرية كان لها نشاط جيد كمضاد للميكروبات ومضادات الأكسدة.

السير الشخصية للمؤلفين

Kelvin Ejiofor Odo، جامعة نيجيريا نسوكا ، ولاية إينوجو، نيجيريا.

وحدة المنتجات الطبيعية، قسم الكيمياء الصيدلانية والطبية، جامعة نيجيريا نسوكا ، ولاية إينوجو، نيجيريا.

Matthias Onyebuchi Agbo، جامعة نيجيريا نسوكا ، ولاية إينوجو، نيجيريا

وحدة المنتجات الطبيعية، قسم الكيمياء الصيدلانية والطبية، جامعة نيجيريا نسوكا ، ولاية إينوجو، نيجيريا.

كلية الكيمياء، جامعة سانت أندروز، سانت أندروز، المملكة المتحدة.

Patience Ogoamaka Osadebe، جامعة نيجيريا نسوكا ، ولاية إينوجو، نيجيريا.

وحدة المنتجات الطبيعية، قسم الكيمياء الصيدلانية والطبية، جامعة نيجيريا نسوكا ، ولاية إينوجو، نيجيريا.

المراجع

Michael, A.C., Dale, D.H. and Maurizio, L. The antimicrobial resistance crisis, consequences and management. Public Health Front. 2014; 2(145):145.

World Health Organization. Antibacterial agents in Clinical Development. Geneva; 2017

Das ,S., Lyke ,P.S. and Khan, A.S. Distribution and generic composition of culturable marine actinomycetes from the sediments of Indian continental slope of Bay Bengal. Chin., J. Oceanol, Limn. 2008; 26:166-177.

Fu C., Lena K. and Armin B. Biosynthetic Studies of Telomycin Reveal New Lipopeptides with Enhanced Activity. J. Am. Chem. Soc. 2015; 137:7692-7705.

Zhang, Y. l, Li ,S., Jang, D.H. and Kong, L.C. Antifungal activities of metabolites produced by termites-associated Streptomyces canus BYB02. J. Agric. Food Chem. 2013; 61:1521-1524.

Yang ,H., Huang, X., Zhang, Z., Wang, C., Zhou, J. and Huang, K. Two Novel Amphomycin Analogues from Streptomyces canus Strain FIM0916. J. Nat Prod. Res. 2014; (28):861-867.

Yoshikawa, T. and Naito, Y. What is Oxidative Stress? JMAJ. 2002; 45(7):271-276.

Al-Dalaen, M. and Al-Qtaitat, A. Oxidative Stress versus antioxidants: Review. American journal of Bioscience and Bioengineering. 2014; 2(5):60-70.

Friedberg, E.C. and Meira, L.B. Database of mouse strains carrying targeted mutations in genes affecting biological responses to DNA damage version 7. DNA Repair. 2006; 5:189-209.

Gupta,R.K., Patel, A.K., Kumari,R., Chugh, S., Shrivastav, C., Mehra, S. and Sharma, A.N. Interactions between oxidative stress, lipid profile and antioxidants in breast cancer: a case control study. Asian Pac J Cancer Prev. 2012; 13(12):6295-6298.

Patekar, D., Kheur, S., Bagul, N., Kulkharni ,M., Mahalle, A., Yashhwan, I. and Dhas, V. Antioxidant Defense System. OMP Journal. 2013; 4(1):976-1225.

Bailey, C.S., Zarins-Tutt, J.S., Agbo ,M.O., Gao ,H., Deigo-Taboada, A., Gan, M., Hammed, R.B., Abraham, E.R., Mackenziel, G., Evans, G.P. and Goss, R.J.M. A Natural Solution to Photoprotection and Isolation of the Potent Antibiotic, Marinomycin A. Chem. Sci. 2019; (Electronic Supplementary Material).

Odekina, P.A., Agbo, M.O. And Omeje, E.O. Antimicrobial and Antioxidant Activities of Novel Marine Bacteria (Bacillus 2011SOCCUF3) isolated from Marine Sponge (Spongia officinalis). Pharm. Sci. 2020; 26(1):82-87.

Magaldi, S., Mata-Essayang, S., Hartung de Caprilles C., Perez, C., Collela ,M.T., Carolina ,O. and Ontiveros ,Y. Well diffusion for antifungal susceptibility testing. Int. J. Infect. Dis. 2004; 8:39-45.

Valgas, C., De Souza, S.M., Smânia, E.F.A., Smânia, A. Screening methods to determine antibacterial activity of natural products. Braz. J. Microbiol. 2007; 38(2):369-380.

Eversole, W.G. and Doughty, E.W. The diffusion coefficients of molecules and ions for measurements of undisturbed diffusion in a stationary medium. J. Phys. Chem. A. 1935; 39:289-292.

Agbo, M.O., Lai, D., Okoye, F.B.C., Osadebe, P.O. and Proksch P. Antioxidative polyphenols from Nigerian mistletoe Loranthus micranthus (Linn.) parasitizing on Hevea brasiliensis. Fitoterapia. 2013; 86:78-83.

Agbo, M.O., Uzor, P.F., Akazie-Nneji, U.N., Eze-Odurukwe, C.U., Ogbatue, U.B. and Mbaoji, EC. Antioxidant, Total Phenolic and Flavonoid Content of Selected Nigerian Medicinal Plants. Dhaka Univ. J. Pharm. Sci. 2015; 14(1):35-41.

Hopwood, D.A. Methods in enzymology, complex enzymes in microbial natural product biosynthesis part A: An overview Articles and Peptides. Elsevier Inc. 2009; 458:93-116.

Karem, S. and Wali, R.K. Current state of immunosuppression: past, present and future. Crit. Rev. Eukaryot. Gene Expr. 2015; 25:113-134.

Edham, M.H. and Bazzaz, A.A. Identification of Streptomyces spp. and assessment of their inhibitory metabolic potency against some pathogenic microorganisms. MRJMMS 2015; 3(11): 511-516.

Kharat, K., Khara,t A. and Hardikar ,B. Antimicrobial and cytotoxic activity of Streptomyces sp. from Lonar Lake. Afr. J. Biotechnol. 2009; 8(23):6645-6648.

Keiser, T., Bibb ,M., Chater, K. and Hopwood, D. General Introduction to Actinomycete Biology. In: Practical Streptomyces Genetics. The John Innes Foundation, Crowes Norwich: England. 2000, pp 1-21.

Berdy, J. Bioactive Microbial Metabolites. J. Antibiot. 2005; 58(1):1-25.

Lucas, X., Senger, C., Erxleben ,A., Gruning ,B.A., Doring, K., Mosch, S., Flemming, S. and Gunthe, S. Streptomyces DB: a resource for natural compounds isolated from Streptomyces species. Nucleic Acids Res. 2013; 41:1130-1136.

Mao ,S., Wang ,K., Lei ,Y., Yao ,S., Baiyi, Lu B. and Huang ,W. Antioxidant synergistic effects of Osmanthus fragrans flowers with green tea and their major contributed antioxidant compounds. Sci. Rep. 2017; 7:46501.

Agbo, M.O., Ezealisiji, K.M., Elijah, P.J., Ukekwe, F.I. and Obonga, WO. Gallic Acid Derivatives (GADs) from Loranthus micranthus Linn. Parasitic on Hevea brasiliensis with Antioxidative Capacity. Dhaka Univ. J. Pharm. Sci. 2015; 14(2):139-145.

Burman, S and Chandra, G A study on antibacterial efficacy of different extracts of Artocarpus chama fruits and identification of bioactive compounds in the most potent extract. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2022; 15(1):70-80.

Jemal, K., Sandeep, B.V. and Sudhakar Pola S. Phytochemical screening and in vitro antioxidant activity analysis of leaf and callus extracts of Allophylus serratus (ROXB) KURZ. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2022; 15(1):51-68.

التنزيلات

منشور

2022-09-01

كيفية الاقتباس

Odo, K. E. ., Agbo, M. O. ., & Osadebe, P. O. . (2022). يمتلك المستخلص والكسور من بكتيريا التربة (Streptomyces canus ATCC 12647) إمكانات مضادات الميكروبات ومضادات الأكسدة في المختبر. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences, 15(3), 405–412. https://doi.org/10.35516/jjps.v15i3.416

إصدار

القسم

Articles