مضاد للجراثيم ومضادات الأكسدة المحتملة من زيزيفوس عناب، فاغونيا أرابيكا، مالوتوس فيليبينسيس وهيميديسموس إنديكوس
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v15i3.417الكلمات المفتاحية:
التحليل الكيميائي النباتي، النشاط المضاد للبكتيريا، كروماتوغرافيا الطبقة الرقيقة، نشاط تثبيط مضخة التدفق البكتيري، قياس الطيف الكتلي اللوني للغازالملخص
المواد الكيميائية النباتية الموجودة في النباتات هي مصدر رئيسي لإضفاء خصائص طبية مختلفة على النبات. أربعة نباتات طبية، أي زيزيفوس عناب مطحنة، فاغونيا أرابيكال، مالوتوس فيليبينسيس (لام.) إم إرمل.- ارج. وهيميديسموس إنديكوس (ل.) تم تقييم شولت لإمكانياتها المضادة للبكتيريا ومضادات الأكسدة. كشف التحليل الكيميائي للإيثانول ومستخلص أسيتات الإيثيل لهذه النباتات عن وجود العديد من المواد الكيميائية النباتية فيها. تم قياس النشاط المضاد للبكتيريا من مقتطفات ضد عصية والزائفة النيابة. من بين جميع المقتطفات، م. فيليبينسيس إيثيل خلات استخراج أعطى أقصى منطقة تثبيط (14 ملليمتر) ضد عصية سب. الحد الأدنى للتركيز المثبط لمستخلص أسيتات الإيثيل فيليبينسيس كان 62.5 ملغم / لتر.تم العثور على مستخلص فيليبينسيس لإظهار أقصى قدر من تثبيط مضخة التدفق البكتيري (155٪). بسبب هذه الخصائص المضادة للبكتيريا، تم فصل اثني عشر مكونات م.فيليبينسيس من قبل تلك. من بين هذه 12، تعرض المكون الذي يظهر إمكانات مضادة للبكتيريا لتحليل غمس الذي أشار إلى أن حمض الفثاليك كان المكون النشط بيولوجيا المسؤول عن هذا النشاط. كما تم تقدير إمكانات مضادات الأكسدة لجميع المستخلصات من خلال فحوصات مختلفة حيث كان لدى م. فيليبينسيس أقصى إمكانات بين الجميع. في الختام، لمستخلص م. فيليبينسيس أقصى إمكانات مضادة للبكتيريا ومضادات الأكسدة ويمكن استخدام المكونات النشطة بيولوجيا المعزولة من هذا النبات في الصناعات الدوائية.
المراجع
Abu-Rabia A., Urinary diseases and ethnobotany among pastoral nomads in the Middle East. J. Ethnobiol. Ethnomed. 2005; 1(1): 4.
Castetter E.F., The domain of ethnobiology. Am. Nat. 1944; 78(775): 158-170.
Shinwari Z.K. and Qaiser M., Efforts on conservation and sustainable use of medicinal plants of Pakistan. Pak. J. Bot. 2011; 43(1): 5-10.
Ghasemzadeh A. and Ghasemzadeh N., Flavonoids and phenolic acids: Role and biochemical activity in plants and human. J. Med. Plants Res. 2011; 5(31): 6697-6703.
Reymond P., et al., Differential gene expression in response to mechanical wounding and insect feeding in Arabidopsis. The Plant Cell. 2000; 12(5): 707-719.
Zengin G., et al., Antioxidant properties of methanolic extract and fatty acid composition of Centaurea urvillei DC. subsp. hayekiana Wagenitz. Rec. Nat. Prod. 2011; 5(2): 123.
Stankovic M.S., Total phenolic content, flavonoid concentration and antioxidant activity of Marrubium peregrinum L. extracts. Kragujevac J. Sci. 2011; 33(2011): 63-72.
Nunes P.X., et al., Biological oxidations and antioxidant activity of natural products, Phytochemicals as nutraceuticals - Global Approaches to Their Role in Nutrition and Health. 2012.
San B. and Yildirim A.N., Phenolic, alpha-tocopherol, beta-carotene and fatty acid composition of four promising jujube (Ziziphus jujuba Miller) selections. J. Food Compost. Anal. 2010; 23(7): 706-710.
Scartezzini P. and Speroni E., Review on some plants of Indian traditional medicine with antioxidant activity. J. Ethnopharmacol. 2000; 71(1): 23-43.
Qureshi H., et al., Chemical composition and medicinal significance of Fagonia cretica: a review. Nat. Prod. Res. 2016; 30(6): 625-639.
Khalid S., Ahmad T., and Shad R., Use of allelopathy in agriculture. Asian J. Plant Sci. 2002; 1(3): 292-297.
Baral S.R. and Kurmi P. P., A compendium of medicinal plants in Nepal. 2006, Kathmandu: Rachana Sharma.
Zaidi S.F.H., et al., Potent bactericidal constituents from Mallotus philippensis against Clarithromycin and Metronidazole resistant strains of Japanese and Pakistani Helicobacter pylori. Bio. Pharma. Bull. 2009; 32.
Mehta A., et al., Anti–arthritis activity of roots of Hemidesmus indicus R. Br.(Anantmul) in rats. Asian Pac. J. Trop. Med. 2012; 5(2): 130-135.
Austin A. and Herbals R., A review on Indian sarsaparilla, Hemidesmus indicus (L.) R. Br. J. Biol. Sci. 2008; 8(1): 1-12.
Boroom N. and Grouh M.S.H., Macroelements nutrition (NPK) of medicinal plants: A review. J. Med. Plants Res. 2012; 6(12): 2249-2255.
Argolo A., Sant'Ana A., Pletsch M., and Coelho L., Antioxidant activity of leaf extracts from Bauhinia monandra. Biores Technol. 2004; 95:229-233
Al-Hussaini R., and Mahasneh A. M., Antibacterial and antifungal activity of ethanol extract of different parts of medicinal plants in Jordan. Jordan J Pharm Sci. 2011; 4(1), 57-69.
Fazali F., Zulkhairi A., Nurhaizan M., Kamal N., Zamree M., and Shahidan M., Phytochemical screening, in vitro and in vivo antioxidant activities of aqueous extract of Anacardium occidentale Linn. and its effects on endogenous antioxidant enzymes in hypercholesterolemic induced rabbits. Res J Biol Sci. 2011; 6:69-74.
Agbafor K. and Nwachukwu N., Phytochemical analysis and antioxidant property of leaf extracts of Vitex doniana and Mucuna pruriens. Biochem. Res. Int. 2011; 2011.
Pourmorad F., Hosseinimehr S., and Shahabimajd N., Antioxidant activity, phenol and flavonoid contents of some selected Iranian medicinal plants. Afr. J. Biotechnol. 2006; 5(11).
Kaur C. and Kapoor H.C., Anti‐oxidant activity and total phenolic content of some Asian vegetables. Int. J. Food Sci. Technol. 2002; 37(2): 153-161.
Haque Z., et al., Medicinal effect of kameela and amraze jildiya (skin diseases) described in unani system of medicine and current research-an overview. Int. J. Pharmacogn. 2015; 2(9): 437-439
Marwah R.G., et al., Antioxidant capacity of some edible and wound healing plants in Oman. Food Chem. 2007; 101(2): 465-470.
Dudonné S., et al., Comparative study of antioxidant properties and total phenolic content of 30 plant extracts of industrial interest using DPPH, ABTS, FRAP, SOD, and ORAC assays. J. Agric. Food Chem. 2009; 57(5): 1768-1774.
Ramamoorthy P.K. and Bono A., Antioxidant activity, total phenolic and flavonoid content of Morinda citrifolia fruit extracts from various extraction processes. J. Eng. Sci. Technol. 2007; 2(1): 70-80.
Klančnik A., et al., Evaluation of diffusion and dilution methods to determine the antibacterial activity of plant extracts. J. Microbiol. Methods. 2010; 81(2): 121-126.
Lou Z., et al., Assessment of antibacterial activity of fractions from burdock leaf against food-related bacteria. Food Control. 2010; 21(9): 1272-1278.
Rodríguez-Pérez M., et al., Evaluación de la actividad antimalárica de algunas plantas utilizadas en la medicina tradicional cubana. Rev. de Ciênc. Farm. Básica e Apl. 2009; 27(3): 197-205.
Wu J.Y., Zhang Q.X., and Leung P.H., Inhibitory effects of ethyl acetate extract of Cordyceps sinensis mycelium on various cancer cells in culture and B16 melanoma in C57BL/6 mice. Phytomedicine. 2007; 14.
Al-Bayati F.A., Synergistic antibacterial activity between Thymus vulgaris and Pimpinella anisum essential oils and methanol extracts. J. Ethnopharmacol. 2008; 116(3): 403-406.
Henie E., Zaiton H., and Suhaila M., Bacterial membrane disruption in food pathogens by Psidium guajava leaf extracts. Int. Food Res. J. 2009; 16: 297-311.
Chavan U. and R. Amarowicz, Effect of various solvent systems on extraction of phenolics, tannins and sugars from beach pea (Lathyrus maritimus L.). Int. Food Res. J. 2013; 20(3): 1139-1144.
Laskar S., Sinhababu A., and Hazra K.M., A modified spray reagent for the detection of amino acids on thin layer chromatography plates. Amino Acids. 2001; 21(2): 201-204.
Khan M., et al., Hexane soluble extract of Mallotus philippensis(Lam.) Muell. Arg. root possesses anti-leukaemic activity. Chem. Central J. 2013; 7(1): 157.
Kavit M., Patel B., and Jain B., Phytochemical analysis of leaf extract of Phyllanthus fraternus. Res. J. Recent Sci. ISSN. 2013; 2: 12-15.
Ugochukwu S.C., Arukwe I., Uche, and Ifeanyi O., Preliminary phytochemical screening of different solvent extracts of stem bark and roots of Dennetia tripetala G. Baker. Asian J. Plant Sci. Res. 2013; 3(3): 10-13.
Wadood A., et al., Phytochemical analysis of medicinal plants occurring in local area of Mardan. Biochem. Anal. Biochem. 2013; 2(144).
Maurya S., Kushwaha A. K., Singh S., and Singh G. An overview on antioxidative potential of honey from different flora and geographical origins. Ind J. Nat. Prod. Res. 2014; 5(1):9-19.
Ahmed D., Khan M.M., and Saeed R., Comparative analysis of phenolics, flavonoids, and antioxidant and antibacterial potential of methanolic, hexanic and aqueous extracts from Adiantum caudatum leaves. Antioxidants. 2015; 4(2): 394-409.
Jan S., et al., Assessment of Antioxidant Potential, Total Phenolics and Flavonoids of Different Solvent Fractions of Monotheca Buxifolia Fruit. Osong Public Health Res. Perspect. 2013; 4(5): 246-254.
Dilshad R., Batool R., and Jamil N., Phytochemical screening and antibacterial potential of Artemisia absinthium L., Swertia chirayita and Sphaeranthus indicus. Pak. J. Pharm. Sci. 2018;31: 499-507.
Van Bambeke, F., Balzi E., and Tulkens P.M., Antibiotic efflux pumps. Biochem. Pharmacol. 2000; 60(4): 457-470.
Sewanu S.O., et al., Antimicrobial and efflux pumps inhibitory activities of Eucalyptus grandis essential oil against respiratory tract infectious bacteria. J. Med. Plants Res. 2015; 9(10): 343-348.
Valgas C., et al., Screening methods to determine antibacterial activity of natural products. Braz. J. Microbiol. 2007; 38(2): 369-380.
Ani H. A., Kadi K. A., Al Obaidi E. D., Shalan N., and Rawi N. A., Investigation of the Alkaloids of Two Ephedra Spp. Wildly Grown in Iraq. Jordan J Pharm Sci. 2014; 7(3).
Sangeetha S., et al., Evaluation of antioxidant activity of the antimicrobial fraction from Sphaeranthus indicus. Int. J. Appl. Biol. Pharm. Technol. 2010; 1(2): 431-436.
