تقييم إمكانات مبيدات الفطريات والنيماتودا في والديدان الخيطية النباتية على الفطريات الممرضة للنبات Reichardia tingitana (L.) Roth
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v16i3.529الكلمات المفتاحية:
الأفلاتوكسين، الرشاشيات فلافوس، الشوك الكاذب، اللوبيول، النيماتودا النباتية، الترايتيربينالملخص
كانت إزالة العديد من مبخرات التربة ومبيدات النيماتودا هي الشغل الشاغل لسلامة الإنسان والبيئة. يمكن أن تسبب مسببات الأمراض الفطرية أمراضًا خطيرة للإنسان والحيوان. تتسبب العقدة العقدية الجذرية، و Meloidogyne incognita و Tylenchulus semipenetrans في حدوث ضرر كبير وانخفاض في الغلة للعديد من النباتات الاقتصادية. لذلك، كان الهدف من الدراسة هو تقييم أنشطة مبيدات الفطريات ومبيدات النيماتودا لمستخلص الإيثانول (EE) و lupeol (L) ؛ عزلة رئيسية للأجزاء الهوائية من Reichardia tingitana L. Roth (Asteraceae) على
Aspergillus flavus والنيماتودا الطفيلية النباتية. تم اختبار التأثيرات المضادة للفطريات لـ EE (10-120 جزء في المليون) و L (23.4- 281.2 ميكرومتر) من خلال مقايسات في المختبر والنمو في الجسم الحي ومقايسات تثبيط إنبات الجراثيم وفعالية تثبيط عدوى القرون والنواة، على التوالي. في حين تم اختبار نشاط مبيد النيماتودا من EE و L خلال تحضير كتل بيض من أنواع النيماتودا M.incognita من الباذنجان المصاب و T. semipenetrans من جذور الحمضيات المصابة بتركيز 2.5،5،10،20،40،80 و 120 جزء في المليون. R. tingitana (EE) و (L) كانا نيماتوستاتيًا أو مبيدًا للنيماتودا لحيوية الديدان الخيطية، وفقس البيض في المختبر، والتطور والتكاثر في الجسم الحي. يلعب Lupeol دورًا فعالاً في تثبيط استعمار A. flavus في الفول السوداني. كان EE و L شديد السمية ضد الديدان الخيطية في التعرض المختبري، كما أنه فعال في السيطرة على إصابة جذور الباذنجان بالديدان الخيطية لمدة 45 يومًا. كان التحسن في معاملات نمو النبات من حيث الفروع وطول الجذور والأوزان متغيرًا ومتناسبًا مع معاملتي EE و L بجرعات مختلفة. تتفوق التأثيرات المضادة للفطريات والمبيدات الحيوية لمستخلص الإيثانول في الجزء الجوي من يمكن استخدام R.tingitana على تأثير اللوبيول الذي يمكن تفسيره على أنه التأثير التآزري للمواد الكيميائية النباتية في مستخلص الإيثانول. كعوامل مضادة للفطريات ومبيدات حيوية.
المراجع
Alfy TE., Tantawy MEE., Motaal A A., Metwally FG. Pharmacological, biological study and GC/MS analysis of the essential oil of the aerial parts and the alcohol soluble fraction of the n. hexane extract of the flowers of Reichardia tingitana L. Can J Pure Appl Sci. 2015; 9: 3167-3175.
Sassi AB., Harzallah-Skhiri F., Bourgougnon N., Aouni M. Antiviral activity of some Tunisian medicinal plants against Herpes simplex virus type 1. Nat Prod Res. 2008; 22: 53-65. DOI: https://doi.org/10.1080/14786410701589790
Boussada O., Kamel MBH., Ammar S., Haouas D., Mighri Z., Helal AN. Insecticidal activity of some Asteraceae plant extracts against Tribolium confusum. B Insectol. 2008; 61: 283-289.
El Sayed A. M., Ezzat S. M., Sabry O. M. A. New anti-bacterial lupane ester from the seeds of Acokanthera oppositifolia Lam., Nat Prod Res.2016; 4: 1-6.
Aristimuño Ficoseco ME., Vattuone MA., Audenaert K., Catalan CA., Sampietro DA. Antifungal and antimycotoxigenic metabolites in Anacardiaceae species from northwest Argentina: isolation, identification, and potential for control of Fusarium species. J Appl Microbiol. 2014; 116(5): 1262-1273. DOI: https://doi.org/10.1111/jam.12436
Horn BW., Dorner JW. Effect of nontoxigenic Aspergillus flavus and A. parasiticuson aflatoxin contamination of wounded peanut seeds inoculated with agricultural soil containing natural fungal populations. Biocont Sci Techno. 2009; l19: 249–262. DOI: https://doi.org/10.1080/09583150802696541
Perrone G., Gallo AAspergillus Species and Their Associated Mycotoxins. Mycotoxigenic fungi. 2016; 1542: 33-49. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4939-6707-0_3
Boutrif E. Prevention of aflatoxin in pistachios. Food Nutr Agric. 1998; 21: 32-38.
Romani L. Immunity to fungal infections. Nat. Rev. Immunol. 2004; 4: 1-23. DOI: https://doi.org/10.1038/nri1255
Severns D. E., Clements M. J., Lambert R. J., White D. G. Comparison of Aspergillus ear rot and aflatoxin contamination in grain of high-oil and normal oil corn hybrids. J Food Prot. 2003; 66: 637-643. DOI: https://doi.org/10.4315/0362-028X-66.4.637
Roze L. V., Hong S. Y., Linz J. E. Aflatoxin biosynthesis: current frontiers. Annu Rev Food Sci T. 2013; 4: 293-311. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev-food-083012-123702
Williams JH., Phillips TD., Jolly PE., Stiles JK., Jolly CM., Aggarwal D. Human aflatoxicosis in developing countries: a review of toxicology, exposure, potential health consequences, and interventions. Am. J. Clin. Nutr. 2004; 80 (5): 1106-1122. DOI: https://doi.org/10.1093/ajcn/80.5.1106
Abbas HK. Aflatoxin and Food Safety. CRC Press. 2005. ISBN 978-0-8247-2303-3.
Van Burik A. and Magee PT. Aspects of fungal pathogenesis in humans. Annu Rev Microbiol. 2001; 55: 743-772. DOI: https://doi.org/10.1146/annurev.micro.55.1.743
Lall N., Meyer JJM. Antibacterial activity of water and acetone extracts of the roots of Euclea natalensis. J Ethnopharmacol. 2000; 72: 313-316. DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-8741(00)00231-2
Magama S., Pretorius JC., Zietsman PC. Antimicrobial properties of extracts from Euclea crispa subsp. crispa (Ebenaceae) towards human, S Afr J Bot. 2002; 69: 199-203. DOI: https://doi.org/10.1016/S0254-6299(15)30345-8
Anonymous, Agriculture Statistics of Pakistan, Govt. of Pakistan, Ministry of Food and Agriculture, Food and Agriculture Division. (Economic wing). Islamabad, Pakistan. 2010.
Khan MW., Khan MR., Khan AA. Identity of root-knot nematodes on certain vegetables of Aligarh district in northern India. International Nematological Network News. 1984; 1: 6-7.
Khan MR. Biological Control of Fusarial Wilt and Root-Knot of Legumes. Government of India Publication, Department of Biotechnology, Ministry of Science and Technology. New Delhi, India. 2005.
ElGayed SH., El Sayed A. M., Al-Ghonaimy AM., Abdel Wahab SM. High performance liquid chromatography-Ultraviolet (HPLC-UV) fingerprint profile and bioactivity of Citrus aurantium var. deliciosa fruits: peel and seeds on certain plant-parasitic nematodes. J Med plants Res. 2017; 11(15): 284-295.
Lee MD In: Nematodes Chapter 5Marek Renčo, Nicola Sasanelli and Lara MaistrelloPlants as Natural Sources of Nematicides ISNB: 978-1-62948-764-9© 2014 NOVA Science publisher, Inc. (2014).
Li G., Lu H., Zhang K. Volatile compound methyl thiobutyrate and application Faming Zhuanli Shenqing Gongkai Shuomingshu, CN103439426A. (in Chinese) 2013.
Nandwana RP, Varma MK, Arjun LAssociation of Tylenchulus semipenetrans with slow decline of citrus in humid South eastern plains of Rajasthan. Ind. J. Nematol. 2005; 35: 222-224.
Raper KB. and Fennell DI. The Genus Aspergillus. Robert EK Publish. Co., Huntington, New York, USA: 1977; 1-68.
Ismail IMK., Salanta A., Ali M., Cuf SA. Bioassay of Eucalyptus rostrata leaf extractives on Sclerotium cepivorum Berk. Egypt J Bot. 1989; 32: 109-26.
Nazli R., Akhter M., Ambreen S., Solangi AH., Sultana N. Insecticidal, nematicidal and antibacterial activities of Gliricidia sepium. Pak J Bot. 2008; 40(6): 2625-2629
Southey JF. Laboratory methods for work with plant and soil nematodes ministry of Agricultural Fish and Food Tech. Bulletin ed.2. Her Majesty`s Stationery Office London. 1970; 148.
Norton DC. Ecollogy of plant parasitic nematode.JonWilleg and Soms, New York. 1978; 238.
Sendecor GW., Cochran WG. Statistical methods. Oxford & J.BH Publishing com.7th edition; 1980.
Duncan D B. Multiple range and multiple F tests. Biometrics. 1955; 11: 1-42. DOI: https://doi.org/10.2307/3001478
Chung PY., Navaratnam P., Chung LY. Synergistic antimicrobial activity between pentacyclic triterpenoids and antibiotics against Staphylococcus aureus strains. Ann Clin Microbiol Antimicrob. 2011; 9:10-25. DOI: https://doi.org/10.1186/1476-0711-10-25
Torres AM., Barros GG., Palacios SA., Chulze SN., Battilani P. Review on pre- and post-harvest management of peanuts to minimize aflatoxin contamination. Food Res Int. 2014; 62: 11-19. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodres.2014.02.023
Raji R., Raveendran K. Antifungal activity of selected plant extracts against phytopathogenic fungi Aspergillus niger. Asian J Plant Sci Res. 2013; 3(1): 13-15.
Hu Y., Zhang J., Weijun K., Gang Z., Meihua Y. Mechanisms of antifungal and anti-aflatoxigenic properties of essential oil derived from turmeric (Curcuma longa L.) on Aspergillus flavus. Food Chem. 2017; 220: 1- 8. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2016.09.179
Tarazona A., Gómez JV., Gavara R., Mateo-Castro R., Gimeno-Adelantado JV., Jiménez M., Mateo E. M. Risk management of ochratoxigenic fungi and ochratoxinA in maize grains by bioactive EVOH films containing individual components of some essential oils. Int J Food Microbiol. 2018; 269: 107-119. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijfoodmicro.2018.02.002
Vaitheeswaran M., Ibrahim SM., Selvapriya P., Kumar JV. Chemotherapeutic action of alanine as soil drench against root –knot nematode, Meloidogyne incognita on Vignaunguiculata. Indian J. Nematol. 2003; 33(2): 136-142.
Kaplan DT., Keen NT., Thomason IJ. Studies on the mode of action of glyceollin in soybean incompatibility to the root knot nematode, Meloidogyne incognita. Physiol. Plant Pathol. 1980; 16: 319-325. DOI: https://doi.org/10.1016/S0048-4059(80)80003-8
Sultana N., Akhte M., Saify ZS., Khatoon Z., Ul-Hasan M., Qazi M. S., Ali Y. Isolation and structure determination of nematicidal iridoid sweroside from Alstonia scholaris. J. Entomol. Nematol. 2013; 5(2): 19-23. DOI: https://doi.org/10.5897/JEN12.003
Atolani O., Fabiyi OA. Plant Parasitic Nematodes Management Through Natural Products: Current Progress and Challenges. In: Ansari R., Rizvi R., Mahmood I. (eds) Management of Phytonematodes: Recent Advances and Future Challenges. 2020 Springer, Singapore. https://doi.org/10.1007/978-981-15-4087-5_13 DOI: https://doi.org/10.1007/978-981-15-4087-5_13
Konstantopoulou I., Vassilopoulou L., Mawogantisi PP., Scouras G. Insecticidal effect of essential oils: a study of essential oils extracted from eleven Greek aromatic plants on Drosophila auroria. Experientia 1994; 48: 616-619. DOI: https://doi.org/10.1007/BF01920251
Napolitano G., Fasciolo G., Venditti P., Mitochondrial Management of Reactive Oxygen Species Antioxidants (Basel, Switzerland). 2021; 10(11): 1824. https://doi.org/10.3390/antiox10111824. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox10111824
ElSayed A.M., El ghwaji W., Youseif Z. M., El-Deeb K.S., ElSayed A.M. Fertility control impact of the aerial parts Ferula tingitana L. via alteration of hypothalamic-pituitary-gonadal axis responses of female Wistar rats. Jordan J. Pharm. Sci. 2022; 15(1). DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v15i1.285
Nour S., Salama M., Mahrous E, El-Askary H., Hifnawy M., Abdel Kawy M.A. Severinia buxifolia Leaves: Isolation, Characterization of Major Metabolites from the Bioactive Fractions and their Antiprotozoal Activity. Jordan J. Pharm. Sci. 2023; 16(1): 18-29. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v16i1.1033
