الفحص الكيميائي النباتي والتقييم الدوائي لمستخلص الميثانول من ورق Cissus elongata Roxb
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v15i4.670الكلمات المفتاحية:
مسكن، مضاد للإسهال، مضاد للالتهابات، خافض للحرارة، سيسوس إيلونغاتاالملخص
أجريت هذه الدراسة لتقييم النشاط الدوائي لمستخلص الميثانول من أوراق Cissus elongata Roxb. تم استخراج الأوراق المجففة من C. elongata مع الميثانول. ثم تم اختبار المستخلص الخام لتحديد وجود مكونات نباتية مختلفة. لتقييم الآثار الدوائية لهذا النبات - تم إجراء اختبارات مسكنة ومضادة للإسهال ومضادة للالتهابات وخافضة للحرارة باستخدام نماذج حيوانية. تم تقييم النشاط المسكن عن طريق اختبار التلويح الناجم عن حمض الخليك، واختبار لعق المخلب الناجم عن الفورمالين واختبار غمر الذيل. تم إجراء اختبار مضاد للإسهال مستحث بزيت الخروع لتقييم النشاط المضاد للإسهال. تم إجراء وذمة الأذن المستحثة بالزيلين واختبار الحموضة الناجم عن الخميرة في البيرة للتحقيق في النشاط المضاد للالتهابات والخافض للحرارة على التوالي. كشف الفحص الكيميائي النباتي عن وجود الكربوهيدرات والعفص والدهون والزيوت الثابتة. في اختبار التلويح، أظهر المستخلص 45.68±3.99٪ و 52.28±1.67٪ تثبيط التلويح بجرعة 200 مجم / كجم و 400 مجم / كجم على التوالي بينما كان 73.09±1.01٪ للدواء القياسي مقارنة بالمجموعة الضابطة. في اختبار لعق المخلب الناجم عن الفورمالين، كانت النسبة المئوية لتثبيط اللعق بواسطة كلتا الجرعتين من المستخلص في المرحلة المتأخرة أكثر من المرحلة الحادة. في اختبار غمر الذيل، لم تظهر جرعة 200 مجم / كجم تأثيرا كبيرا ولكن 40 0 مجم / كجم أظهرت نشاطا مسكنا كبيرا (* P <0.05 مقابل السيطرة) في 30 دقيقة و 60 دقيقة و 120 دقيقة فترات زمنية. في دراسة مضادة للإسهال، أظهرت جرعة 400 ملغم / كغم (68.42±0.87 ٪ تثبيط الإسهال) تأثير مضاد للإسهال مماثل تقريبا للدواء القياسي لوبيراميد هيدروكلورايد (71.05±0.58 ٪). في اختبار وذمة الأذن الناجم عن الزيلين، أظهرت كلتا الجرعتين من المستخلص تأثيرا مضادا للالتهابات قليلا مقارنة بالدواء القياسي ولكن كلتا الجرعتين أظهرتا انخفاضا كبيرا (* P <0.05 مقابل السيطرة) في درجة حرارة الجسم في دراسة خافض للحرارة.
المراجع
Kumar, V. S., & Navaratnam, V. Neem (Azadirachta indica): Prehistory to contemporary medicinal uses to humankind. Asian Pacific journal of tropical biomedicine. 2013; 3(7), 505-514.
Fernandes, G. and Banu, J. Medicinal properties of plants from the genus Cissus: A review. Journal of Medicinal Plants Research. 2012; 6(16); 3080-3086.
Ali H, Alkowni R, Jaradat N, Masri M. Evaluation of phytochemical and pharmacological activities of Taraxacum syriacum and Alchemilla arvensis. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2021;14(4).
Rahman M, Majumder S, Akter F, Islam F, Shahriar M, Alam J. Pre-clinical investigation of analgesic, anti-diarrheal and CNS depressant effect of Pterocarpus indicus in Swiss albino mice. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2021;14(1).
Rashid, M.H., Islam, S., Kashem, B. Floristic diversity (Magnoliids and Eudicots) of Baraiyadhala National Park, Chittagong, Bangladesh. Bangladesh Journal of Plant Taxonomy. 2018; 25(2); 273-288.
Khatun, M., Hassan, M.A., Islam S.N., Rahman, M.O. (). Taxonomy of the leafy vegetables in Bangladesh. Bangladesh Journal of Plant Taxonomy. 2013; 20(1); 95-123.
Tsai, W.H. and Wu, S.C. Cissus elongata Roxb. (Vitaceae), a new addition to the flora of Taiwan. Taiwania. 2000; 45(3); 235-238.
Kunder, P.R. and Vidya, S.M. Ethnomedicinal importance of rare family member of Vitaceae, Cissus elongata Roxb. Conference on Conversation and Sustainable Management of Ecologically Sensitive Regions of Western Ghats. 2016.
Raihan O, Brishti A, Bahar E, Islam F, Rahman M, Tareq SM, Hossain MA. Antioxidant and anticancer effect of methanolic extract of Aerva lanata Linn. against Ehrlich Ascites Carcinoma (EAC) in vivo. Oriental Pharmacy and Experimental Medicine. 2012 Sep;12(3):219-25.
Institute of Laboratory Animal Resources, Commission on Life Sciences, National Research Council. Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. National Academy Press, Washington, 1996, pp. 65, 21–48.
Aziz, M.A. Qualitative phytochemical screening and evaluation of anti-inflammatory, analgesic and antipyretic activities of Microcos paniculata barks and fruits. Journal of Integrative Medicine. 2015; 13(3); 173–184.
Billmary C., Janne R., Lucero M., María C. Preliminary phytochemical screening of Pimenta racemosa var. racemose (Myrtaceae) from Táchira Venezuela. Pharmacology online. 2014; 2; 61–68.
Moushome, R. A., Akter, M., & Aziz, M. Phytochemical screening and antinociceptive and anti-diarrheal activities of hydromethanol and petroleum benzene extract of Microcos paniculata barks. BioMed research international. 2016.
Naima, J., Islam, M. R., Proma, N. M., Afrin, S. R., Rajib, M., & Hossain, H. M. K. Phytochemical screening and antinociceptive activity of Mimosa diplotricha leaves. International Journal of Pharmaceutical Science and Research. 2019 10(8), 3679-84.
Niloy SI, Sajon SR, Ahmed MS, Jahan S. Methanolic Extract Induced Analgesic and Antipyretic Activity of Hemigraphis hirta. Journal of Pharmaceutical Research International. 2017 Dec 22:1-7.
Aydin, S., Demir, T., Ozturk, Y., Baser, K.H. Analgesic activity of Nepeta italica L. Phytotherapy research. 1999; 13; 20–23.
Shoba, F.G. and Thomas, M. Study of anti-diarrheal activity of four medicinal plants in case of induced diarrhea. Journal of Ethno Pharmacology. 2001; 76(1); 73-76.
Tang, X.C., Lin, Z.G., Cai, W., Chen, N., Shen, L. Anti-inflammatory effect of 3-acetylaconitine. Acta Pharm.Sinica. 1984; 5; 85-89.
Srinivasan, K., Muruganandan, S., Lal, J., Chandra, S., Tandan, S.K., Kumar, D. Antinoiceptive and antipyretic activities of Pongamia piñata leaves. Phytotherapy Research. 2003; 17(3); 259-264.
Craig, C. R., & Stitzel, R. E. Modern pharmacology with clinical applications. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins. 2004.
Dale, M. M., Rang, H. P., & Dale, M. M. Rang & Dale's pharmacology. Edinburgh: Churchill Livingstone. 2007.
Boursinos, L.A., Karachalios T., Poultisides L., and malizos, T.K. Do steroids, conventional non-steroidal anti-inflammatory drugs and selective Cox-2 inhibitors adversely affect fracture healing. Journal of Musculoskelet Neuronal Interact. 2009; 9; 44-52.
Sparkes, A., Heiene, R., Lascelles, B.D., Malik, R., Sampietro, L.R., Robertson. S. et al. NSAIDs and cats- it‟s been a long journey. Journal of Feline Medicine and Surgery. 2010; 12; 519–538.
Shivaji, P.G. Acetic acid induced painful endogenous infliction in writhing test on mice. Journal of Pharmacology and Pharmacotherapeutics. 2012; 3(4); 348.
Gupta, A.K., Parasar, D., Sagar, A., Choudhary, V. et al. Analgesic and anti-inflammatory properties of Gelsolin in acetic acid induced writhing, tail immersion and carrageenan induced paw edema in mice. PLoS ONE. 2015; 10(8); 1-16.
Voiley, N. Acid-Sensing ion channels (ASICs): New target for analgesic effects of Non-Steroidal Anti-Inflammatory Drugs (NSAIDs). Current Drug Target- Inflammation and Allergy. 2004; 3; 71-79.
Ronaldo, A.R., Mariana, L.V., Sara, M.T., Adriana, B.P.P et al. Involvement of resident macrophages and mast cells in the writhing nociceptive response induced zymosan and acetic acid in mice. European Journal of Pharmacology. 2000; 38(7); 111-118.
Ibrar, M., Muhammad, N., Barakatullah, Khan, H., Jahan, F., Ashraf, N. Antinociceptive and anticonvulsant activities of essential oils of Zanthoxylum armatum. Phytoparmacology. 2012; 3(1); 169-177.
Meirer, K., Steinhilber, D., Proschak, E. Inhibitors of the arachidonic acid cascade: Interfering with multiple pathways. Basic & Clinical Pharmacology and Toxicology. 2014; 114(1); 89-91.
Chang, H.Y., Sheu, M.J., Yang, C.H., Lu, T.C. et al. Analgesic effects and mechanism of anti-inflammation of Hispolon in mice. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine, 2011; 1-8.
Shibata, M., Ohkubo, T., Takahashi, H., Inoki, R. Modified formalin test: characteristic biphasic pain response. Pain, 1989; 38(3); 347–352.
Tjolsen, A., Berge, O.G., Hunskaar, S., Rosland, J.H., Hole, K. The formalin test: an evaluation of the method. Pain. 1992; 51(1); 5–17.
Yu, T., Lao, X., Zheng, H. Influencing COX-2 activity by COX related pathways in inflammation and cancer. Mini-Reviews in Medicinal Chemistry. 2016; 16(15); 1230–1243.
Sarmento-Neto, J.F., Do Nascimento, L.G., Felipe, C.F.B. and De Sousa, D.P. Analgesic potential of essential oils. Molecules. 2016; 21(1); 20.
Liu, Y., Chen, Z., Shang E.C. et al. Controlling arachidonic acid metabolic network: from single- to multi-target inhibitors of key enzymes. Acta Pharmaceutica Sinica. 2009; 44; 231–234.
Zhao, J., Maitituersun, A., Li, Q., Li, C., Liu, F.X.T. (2018) Evaluation on analgesic and anti-inflammatory activities of total flavonoids from Juniperus Sabina. Evidence-Based Complementary and Alternative Medicine. 2018; 1-9.
Yasmen, N., Aziz, M.A., Tajmim, A., Akter, M.I. et al. Analgesic and anti-inflammatory activities of Diethyl Ether and n-Hexane extract of Polyalthia suberosa leaves. Evidence Based Complementary and Alternative Medicines, 2018; 1-8.
Mekonnen, B., Asire, A.B., Wubneh, Z.B. Anti-diarrheal activity of 80% Methanolic Leaf Extract of Justicia schimperiana. Evidence Based Complementary and Alternative Medicines, 2018; 1-7.
Devi, H.M. and Singh, N.I. Traditional medicinal uses and pharmacological properties of Rhus chinensis Mill.: A systematic review. European Journal of Integrative Medicine. 2018; 21; 43-49.
Ryan, M. and Levy, M.M. Clinical review: fever in intensive care unit patients. Critical Care. 2003; 7(3); 221-225.
Zampronio, A.R., Soares, D.M, Souza, G.E.P. Central mediators involved in the febrile response: effects of antipyretic drugs. Temparature. 2015; 2(4); 506-521.
Arnoff, D.M. and Neilson, E.G. Antipyretics: mechanism of action and clinical use in fever suppression. American Journal of Medicine. 2001; 111(4); 304-315.
Hajare, S.W., Chandra, S., Tandan, S.K., Sharma, J et al. Analgesic and antipyretic activities of Dalbergia sissoo leaves. Indian Journal of Pharmacology. 2000; 32; 357-360.
