الإمكانيات المضادة للأكسدة والمضادة للميكروبات لاستخلاص أوراق نبات نيكوتيانا غلاوكامستخلصات أوراق غراهام وجزيئات الفضة النانوية المصنعة: نهج فيتوكيميائي

المؤلفون

  • Tsion Guta قسم الأحياء التطبيقية، كلية العلوم الطبيعية التطبيقية، جامعة أداما للعلوم والتكنولوجيا، إثيوبيا.
  • Kero Jemal قسم الأحياء التطبيقية، كلية العلوم الطبيعية التطبيقية، جامعة أداما للعلوم والتكنولوجيا، إثيوبيا.

DOI:

https://doi.org/10.35516/jjps.v18i1.2180

الكلمات المفتاحية:

مضاد ميكروبي، مضاد أكسدة، نيكوتيانا غلاوكا، مركب نباتي، جزيئات الفضة النانوية

الملخص

نبات نيكوتيانا غلاوكا هو نبات طبي ينتمي إلى جنس نيكوتيانا ويستخدم تقليديًا لعلاج العديد من الأمراض. تهدف هذه الدراسة إلى فحص محتوى المواد الكيميائية النباتية في مستخلصات أوراق نبات Nicotiana glauca، وتخليق جزيئات الفضة النانوية باستخدام المستخلصات، وتقييم أنشطتها المضادة للأكسدة والمضادة للميكروبات. تم جمع عينات الأوراق، وتجفيفها في الهواء، وطحنها إلى مسحوق. تم نقع مسحوق الأوراق في الماء المقطر، الميثانول، الن-هكسان، والكلوروفورم لاستخراج المواد الكيميائية النباتية. تم إجراء التحليل الكيميائي النباتي باستخدام الطرق القياسية. تمت عملية تخليق جزيئات الفضة النانوية عن طريق خلط محلول نترات الفضة بتركيز 3 مللي مولار مع مستخلص النبات، وتم توصيف جزيئات الفضة النانوية الناتجة باستخدام حيود الأشعة السينية والتصوير المجهري الإلكتروني الماسح. تم تقييم الأنشطة المضادة للأكسدة للمستخلصات والجسيمات النانوية الفضية التي تم تصنيعها بواسطة اختبار DPPH للكشف عن الجذور الحرة، وتم تقييم الأنشطة المضادة للميكروبات في المختبر باستخدام طريقة انتشار الأقراص في الأجار ضد سلالات بكتيرية وفطرية مختارة. نتيجة التحليل الكيميائي النباتي أشارت إلى وجود القلويدات، والصابونينات، والفلافونويدات، والتربينويدات، والتانينات، والفينولات، والستيرويدات، والجليكوسيدات. أظهرت نتائج تقييم نشاط مضادات الأكسدة لجزيئات الفضة النانوية، ومستخلص الميثانول، ومستخلص الكلوروفورم، ومستخلص الن-هكسان أن لديها أنشطة مضادة للأكسدة جيدة بشكل ملحوظ. أظهر تحليل نشاط مضادات الأكسدة أيضًا أن نسبة التثبيط وIC50 كانتا معتمدتين على الجرعة. أظهرت الجسيمات النانوية الفضية المصنعة أعلى نشاط مضاد للأكسدة بقيمة IC50 تبلغ 78 ميكروغرام/مل، وأعطى مستخلص الميثانول قيمة IC50  تبلغ170  ميكروغرام/مل. أظهرت نتائج تقييم الأنشطة المضادة للميكروبات أن مستخلص النبات والجسيمات النانوية الفضية المُصنَّعة لهما أنشطة مضادة للميكروبات. أعلى منطقة تثبيط تم ملاحظتها كانت 16.33±1.155 مم لجزيئات الفضة النانوية المصنعة و15.33±1.155 مم لاستخراج النبات. أدنى منطقة تثبيط تم ملاحظتها كانت 9.67±0.577 مم لجزيئات الفضة النانوية المصنعة و7.33±0.577 مم لاستخراج النبات. بشكل عام، تمتلك مستخلصات النباتات والجسيمات النانوية الفضية المُصنَّعة أنشطة قوية مضادة للأكسدة ومضادة للميكروبات. يجب إجراء مزيد من الدراسات على المكونات الكيميائية النباتية، والأنشطة المضادة للأكسدة، والأنشطة المضادة للميكروبات لهذه النبتة.

المراجع

Rasool H.B. Medicinal Plants. Importance and Uses. Pharmaceut. Anal. Acta. 2012, 3:e139. https://doi.org/10.4172/2153-2435.1000e139 DOI: https://doi.org/10.4172/2153-2435.1000e139

Abate, L., Tadesse, M. G., Bachheti, A. and Bachheti, R. K. Traditional and Phytochemical Bases of Herbs, Shrubs, Climbers, and Trees from Ethiopia for Their Anticancer Response. BioMed Research International. 2022, 27. https://doi.org/10.1155/2022/1589877 DOI: https://doi.org/10.1155/2022/1589877

Bekele E. Study on actual situation of medicinal plants in Ethiopia. 2007:54-60. http://www.endashaw.com

Abate, L., Bachheti, R. K., Tadesse, M. G. and Bachheti, A. Ethnobotanical Uses, Chemical Constituents, and Application of Plantago lanceolata L. Journal of Chemistry. 2022, 17. https://doi.org/10.1155/2022/1532031 DOI: https://doi.org/10.1155/2022/1532031

Aneesh, T., Hisham, M., Sekhar, M., Madhu, M. and Deepa, T. International market scenario of traditional Indian herbal drugs - India declining. International Journal of Green Pharmacy. 2009; 3(3):184–190. https://doi.org/10.4103/0973-8258.56271 DOI: https://doi.org/10.4103/0973-8258.56271

Madhu, M., Sailaja, V., Satyadev, T. and Satyanarayana, M. V. Quantitative phytochemical analysis of selected medicinal plant species by using various organic solvents. Journal of Pharmacognosy and Phytochemistry. 2016;5(2): 25–29.

Tadeg, H., Mohammed, E., Asres, K. and Gebre-Mariam, T. Antimicrobial activities of some selected traditional Ethiopian medicinal plants used in the treatment of skin disorders. Journal of Ethnopharmacology. 2005; 100(1–2),168–175. https://doi.org/10.1016/j.jep.2005.02.031 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2005.02.031

Mulata, H. N., Gnanasekaran, N., Melaku, U. and Daniel, S. Phytochemical Screening and Assessment of In Vitro Antioxidant Activities of Calpurnia Aurea Seeds and Leaves. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Research. 2015;2(2):1–12.

Chinemerem Nwobodo, D., Ugwu, M. C., Oliseloke Anie, C., Al-Ouqaili, M. T. S., Chinedu Ikem, J., Victor Chigozie, U. and Saki, M. Antibiotic resistance: The challenges and some emerging strategies for tackling a global menace. Journal of Clinical Laboratory Analysis. 2022; 36(9):1–10. https://doi.org/10.1002/jcla.24655 DOI: https://doi.org/10.1002/jcla.24655

Maroyi, A. Traditional use of medicinal plants in south-central Zimbabwe: Review and perspectives. In Journal of Ethnobiology and Ethnomedicine. 2013;9(1). https://doi.org/10.1186/1746-4269-9-31 DOI: https://doi.org/10.1186/1746-4269-9-31

Kumar, A., Kalia, A. N. and Singh, H. In Vitro Antioxidant Potential of Polyherbal Formulation of Three Different Herbal Drugs. 2020;10(4):70–76. DOI: https://doi.org/10.35652/IGJPS.2020.104010

Killedar, S., More, H., Mali, S., Nadaf, S., Salunkhe, S. and Karade, R. Research Article Phytochemical Screening and in Vitro Antioxidant Potential of Memecylon umbellatum Burm Leaf Extracts. Journal of Drug Delivery & Therapeutics. 2014;4(2):30–35. DOI: https://doi.org/10.22270/jddt.v4i2.788

Valko, M., Rhodes, C. J., Moncol, J., Izakovic, M. and Mazur, M. Free radicals, metals and antioxidants in oxidative stress-induced cancer. Chemico-Biological Interactions. 2006;160(1):1–40.

https://doi.org/10.1016/j.cbi.2005.12.009 DOI: https://doi.org/10.1016/j.cbi.2005.12.009

Vivekananthan, D. P., Penn, M. S., Sapp, S. K., Hsu, A. and Topol, E. J. Erratum: Use of antioxidant vitamins for the prevention of cardiovascular disease: Metaanalysis of randomized trials. 2004; 361 (9374): 2017-2023. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(04)15614-6 DOI: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(03)13637-9

Ashraf, J. M., Ansari, M. A., Khan, H. M., Alzohairy, M. A. and Choi, I. Green synthesis of silver nanoparticles and characterization of their inhibitory effects on AGEs formation using biophysical techniques. Scientific Reports. 2016;6(6):1–10.

https://doi.org/10.1038/srep20414 DOI: https://doi.org/10.1038/srep20414

Siddiqi, K. S., Husen, A. and Rao, R. A. . A review on the biosynthesis of silver nanoparticles and their biocidal properties. Journal of Nanobiotechnology. 2018; 16(1):14. https://doi.org/10.1186/s12951-018-0334-5

Asma, R. Assessment of the antifungal activity of Nicotiana glauca Graham aqueous and organic extracts against some pathogenic and antagonistic fungi. African Journal of Microbiology Research. 2012; 6(22):4655–4661. https://doi.org/10.5897/ajmr11.979 DOI: https://doi.org/10.5897/AJMR11.979

Tabana, Y. M., Dahham, S. S., Hassan, L. E. A., Al-mansoub, M. A., Taleb-agha, M. and Majid, A. M. S. A. In Vitro Anti-Metastatic and Antioxidant Activity of Nicotiana glauca Fraction Against Breast Cancer Cells EMAN Research and Testing Laboratory, School of Pharmaceutical Sciences. 2015; 9(2):95–102. https://doi.org/10.5829/idosi.abr.2015.9.2.9521

Yirga Haile, Y. M., Tadesse, T. and Bekuma, A. Coprological Study on Lungworm Infection of Small Ruminants. American-Eurasian Journal of Scientific Research. 2018; 13(3):47–52.

https://doi.org/10.5829/idosi.aejsr.2018.47.52

Asfaw Geresu, M., Assefa Wayuo, B., and Mamo Kassa, G. Occurrence and antimicrobial susceptibility profile of salmonella isolates from animal origin food items in selected areas of Arsi zone, southeastern Ethiopia, 2018/19. International Journal of Microbiology. 2021. https://doi.org/10.1155/2021/6633522 DOI: https://doi.org/10.1155/2021/6633522

Kero Jemal, B. V. Sandeep, and Sudhakar Pola. Synthesis, Characterization, and Evaluation of the Antibacterial Activity of Allophylus serratus Leaf and Leaf Derived Callus Extracts Mediated Silver Nanoparticles. Journal of Nanomaterials. 2017.

https://doi.org/10.1155/2017/4213275 DOI: https://doi.org/10.1155/2017/4213275

Karthikeyan, G. and Vidya, A. K. Phytochemical Analysis, Antioxidant and Antibacterial Activity of Pomegranate Peel. Life Science Informatics Publication. 2019; 5(218):218–231.

https://doi.org/10.26479/2019.0501.22 DOI: https://doi.org/10.26479/2019.0501.22

Kumar, A., Ilavarasan, R., Jayachandran, T., Decaraman, M., Aravindhan, P., Padmanabhan, N. and Krishnan, M. R. V. Phytochemicals investigation on a tropical plant, Syzygium cumini from Kattuppalayam, Erode District, Tamil Nadu, South India. Pakistan Journal of Nutrition. 2009; 8(1):83–85. https://doi.org/10.3923/pjn.2009.83.85 DOI: https://doi.org/10.3923/pjn.2009.83.85

Santhi, K. and Sengottuvel, R. Qualitative and Quantitative Phytochemical Analysis of Moringa concanensis Nimmo. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences. 2016; 5(1):633–640. https://doi.org/10.20546/ijcmas.2016.501.064 DOI: https://doi.org/10.20546/ijcmas.2016.501.064

Trifa, W., Akkal, S., Lefahal, M., Benmekhebi, L. and Khennouf, S. Preliminary screening of Nicotiana glauca extracts for determination of antioxidant activity by different methods. Current Issues in Pharmacy and Medical Sciences. 2020; 33(1):32–37.

https://doi.org/10.2478/cipms-2020-0007 DOI: https://doi.org/10.2478/cipms-2020-0007

Ukoha, P. O., Cemaluk, E. A. C., Nnamdi, O. L. and Madus, E. P. Tannins and other phytochemical of the Samanaea saman pods and their antimicrobial activities. African Journal of Pure and Applied Chemistry. 2011; 5(8):237–244. http://www.academicjournals.org/AJPAC

Auwal, M. S., Saka, S., Mairiga, I. A., Sanda, K. A., Shuaibu, A. and Ibrahim, A. Preliminary phytochemical and elemental analysis of aqueous and fractionated pod extracts of Acacia nilotica (Thorn mimosa). Veterinary Research Forum : An International Quarterly Journal. 2014;5(2):95–100.

Longbap, B., Ushie, O. A., Ogah, E., Kendenson, A. C. and Nyikyaa, J. T. Phytochemical Screening and Quantitative Determination of Phytochemicals in Leaf Extracts of Hannoa undulata. International Journal of Medicinal Plants and Natural Products. 2018; 4(2):32–38. https://doi.org/10.20431/2454-7999.0402005 DOI: https://doi.org/10.20431/2454-7999.0402005

Mohsen, M.S. and Ammar, S.M.A. Total phenoliccontents and antioxidant activity of corn tassel extracts. Food Chem. 2008; 112:595-598. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2008.06.014

Adedapo, A. A., Jimoh, F. O., Koduru, S., Afolayan, A. J. and Masika, P. J. Antibacterial and antioxidant properties of the methanol extracts of the leaves and stems of Calpurnia aurea. BMC Complementary and Alternative Medicine. 2008; 8,1–8. https://doi.org/10.1186/1472-6882-8-53 DOI: https://doi.org/10.1186/1472-6882-8-53

Mahomoodally, M. F., Gurib-Fakim, A. and Subratty, A. H. Antimicrobial activities and phytochemical profiles of endemic medicinal plants of Mauritius. Pharmaceutical Biology. 2005; 43(3):237–242.

https://doi.org/10.1080/13880200590928825 DOI: https://doi.org/10.1080/13880200590928825

Birhan, M., Tessema, T., Kenubih, A. and Yayeh, M. In Vitro Antimicrobial Evaluation of Aqueus Methanol Extract from Calpurina Aurea (Fabaceae) Leaves. In Vitro Antimicrobial Evaluation of Aqueus Methanol Extract from Calpurina Aurea (Fabaceae) Leaves. Asian J. Med. Pharm. Res. 2018, 8(4):33–43.

Abdi, M. I., Hassan, A. A., Abdirahman, F. A., and Weldegebriel, S. In-Vitro Evaluation of Antibacterial Activity of Nerium oleander, Solanum. OIRT Journal of Scientific Research. 2022; 2(5):50-59.

Mergia, E., Shibeshi, W., Terefe, G. and Teklehaymanot, T. Clinical & Experimental Pathology Phytochemical Screening and In Vitro Antitrypanosomal Activity of Aqueous and Methanol Leaf Extract of Verbascum sinaiticum (Scrophulariaceae) against. 2014; 4(4). https://doi.org/10.4172/2161-0681.1000183 DOI: https://doi.org/10.4172/2161-0681.1000183

Mergia, E., Shibeshi, W., Terefe, G. and Teklehaymanot, T. Antitrypanosomal activity of Verbascum sinaiticum Benth. (Scrophulariaceae) against Trypanosoma congolense isolates. BMC Complementary and Alternative Medicine. 2016; 1–9.

https://doi.org/10.1186/s12906-016-1346-z DOI: https://doi.org/10.1186/s12906-016-1346-z

Najah, Z., M. Elsherif, K., Kawan, E. and Farah, N. Phytochemical Screening and Heavy Metals Contents of Nicotiana glauca Plant. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Research. 2015; 4(3):82–91. www.ijppr.humanjournals.com

Hassan E. Hassan, Turk Z. Abd El-Ham E. and Elfek Y. A. Nasr. Ecological and Phytochemic Al Studies on Nicotiana Glauca from Egypt. Egypt. J. Exp. Biol. (Bot.). 2014; 10(1): 87–95. http://www.egyseb.org

Gutiérrez A. D. M., Bah, M., Garduño R, M. L., Mendoza D, S. O. and Serrano C. V. Anti-inflammatory and antioxidant activities of methanol extracts and alkaloid fractions of four Mexican medicinal plants of Solanaceae. African Journal of Traditional, Complementary, and Alternative Medicines: AJTCAM / African Networks on Ethnomedicines. 2014; 11(3):259–267.

https://doi.org/10.4314/ajtcam.v11i3.36 DOI: https://doi.org/10.4314/ajtcam.v11i3.36

Abeysinghe, D. T., Kumara, K. A. H., Kaushalya, K. A. D., Chandrika, U. G. and Alwis, D. D. D. H . Phytochemical screening, total polyphenol, flavonoid content, in vitro antioxidant and antibacterial activities of Sri Lankan varieties of Murraya koenigii and Micromelum minutum leaves. Heliyon. 2021; 7(7):e07449. https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2021.e07449 DOI: https://doi.org/10.1016/j.heliyon.2021.e07449

Lidia Al-Halaseh, Reem Issa, Rana Said and Rawan Al-suhaimat. Antioxidant Activity, Phytochemical Screening, and LC/MS-MS Characterization of Polyphenol Content of Jordanian Habitat of Pennisetum Setaceum Aqueous Leaf Extract. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024;17(4). https://doi.org/10.35516/jjps.v17i4.2442 DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i4.2442

Tungmunnithum, D., Thongboonyou, A., Pholboon, A., and Yangsabai, A. Flavonoids and Other Phenolic Compounds from Medicinal Plants for Pharmaceutical and Medical Aspects: An Overview. Medicines. 2018; 5(3):93. https://doi.org/10.3390/medicines5030093 DOI: https://doi.org/10.3390/medicines5030093

Prosberg, M., Bendtsen, F., Vind, I., Petersen, A. M. and Gluud, L. L. The association between the gut microbiota and the inflammatory bowel disease activity: a systematic review and meta-analysis. Scandinavian Journal of Gastroenterology. 2016; 51(12):1407–1415.

https://doi.org/10.1080/00365521.2016.1216587 DOI: https://doi.org/10.1080/00365521.2016.1216587

Puspitasari E., Triatmoko B., Dianasari D., Muslichah S. and Nugraha A. S. Assessment of Extraction Methods Effects on the Biological Activities (Antioxidant and Antiamylase) and Chemistry (Total Phenolics and Flavonoids) of Guazuma ulmifolia Leaves. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024; 17(1). DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i1.1171

Naskar A., Dasgupta A. andAcharya K. Antioxidant and cytotoxic activity of Lentinus fasciatus. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2023; 16(1):72-81. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v16i1.1064

Gopalakrishnan, S., Kaupa, P., Lakshmi, S. Y. S. and Banu, F. Antimicrobial activity of synthesized silver nanoparticles and phytochemical screening of the aqueous extract of Antiaris toxicaria. Indian Journal of Nanoscience. 2015; 4(1):2–5.

Sarsar, V., Selwal, M. K. and Selwal, K. K. Significant parameters in the optimization of biosynthesis of silver nanoparticles using Psidium guajava leaf extract and evaluation of their antimicrobial activity against human pathogenic bacteria. Pharmanest. 2014; 5(1):1769–1775.

Ali Alghamdi, A. Phytoconstituents screening and antimicrobial activity of the invasive species Nicotiana glauca collected from Al-Baha region of Saudi Arabia. Saudi Journal of Biological Sciences. 2021; 28(3);1544–1547. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2020.12.034 DOI: https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2020.12.034

Jyoti, K., Baunthiyal, M. and Singh, A. Characterization of silver nanoparticles synthesized using Urtica dioica Linn. leaves and their synergistic effects with antibiotics. J. Radiat. Res. Appl. Sci. 2016; 9(3):217–227. https://doi.org/10.1016/j.jrras.2015.10.002 DOI: https://doi.org/10.1016/j.jrras.2015.10.002

Siddiqi, K. S., Husen, A. and Rao, R. A. K. A review on biosynthesis of silver nanoparticles and their biocidal properties. J. Nanobiotechnol. 2018.

https://doi.org/10.1186/s12951-018-0334-5 DOI: https://doi.org/10.1186/s12951-018-0334-5

Banala, R. R., Nagati, V. B. and Karnati, P. R. Green synthesis and characterization of Carica papaya leaf extract coated silver nanoparticles through X-ray diffraction, electron microscopy and evaluation of bactericidal properties. Saudi J. Biol. Sci. 2015; 22(5):637–644. https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2015.01.007 DOI: https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2015.01.007

Sümengen Özdenefe, M., Mercimek Takcı, A., and Büyükkaya Kayış, F.. Antibacterial, Antioxidant, Antidiabetic Potentials and Chemical Composition of Nicotiana glauca Graham Leaf Extract. Journal of Anatolian Environmental and Animal Sciences. 2023; 8(4):700-706. https://doi.org/10.35229/jaes.1325678 DOI: https://doi.org/10.35229/jaes.1325678

التنزيلات

منشور

2025-03-25

كيفية الاقتباس

Guta, T., & Jemal, K. (2025). الإمكانيات المضادة للأكسدة والمضادة للميكروبات لاستخلاص أوراق نبات نيكوتيانا غلاوكامستخلصات أوراق غراهام وجزيئات الفضة النانوية المصنعة: نهج فيتوكيميائي. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences, 18(1), 57–76. https://doi.org/10.35516/jjps.v18i1.2180

إصدار

القسم

Articles