التركيب الكيميائي للزيوت الأساسية الفينولات الكلية والفعالية المضادة للأكسدة لـ Achillea fragrantissima و A. santolina النامي في سوريا
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v17i3.2389الكلمات المفتاحية:
Achillea fragrantissima، A. santolina، زيت عطري، الفنولات الكلية، الفعالية المضادة للأكسدةالملخص
الهدف من هذه الدراسة هو تحري المكونات الفعالة في الزيوت الأساسية وتحديد المحتوى الفينولي الكلي والفعالية المضاة للأكسدة لأزهار نبات Achillea fragrantissima وA. santolina التي جمعت من القلمون (ريف دمشق، سوريا). استخلاص الزيت الأساسي لأزهار النباتين وحللت باستخدام جهاز الكروماتوغرافيا الغازية ومطياف الكتلة (GC-MS). حضرت ثلاثة خلاصات باستخدام الماء المقطر والميثانول والكلوروفورم. حدد المحتوى الفينولي الكلي و الفعالية المضادات للأكسدة في الخلاصات. أظهرت النتائج وجود 20 مكوناً في الزيت الأساسي لنبات A. fragrantissima. المركبات الرئيسية الموجودة هي بيتا ثوجون (39.63%)، يليها كحول السانتولينا (15.54%)، كيتون الأرتيميسيا (15%)، وألفا ثوجون (10.58%). تم التعرف على 16 مكوناً في الزيت العطري لنبات A. santolina. المركبات الرئيسية هي الكافور (49.13%)، والأوكالبتول (17.13%)، والتيربين-4-أول (8.29%). احتوى الزيت الأساسي والخلاصات المائية والميثانولية والكلوروفورمية لـ A. santolina على (414.2، 1388.4، 2084.2، و965.7 مغ من TAE/غ من الخلاصة الجافة)، على التوالي. في التفاعل مع 2،2-ثنائي فينيل-1- بيكريل هيدرازيل، كانت قيمة التراكيز المثبطة لنصف الجذور الحرةهي (105، 120، و110 مكغ/لتر) للخلاصات المائية والميثانولية والكلوروفورمية لـنباتA. fragrantissima على التوالي، و(720 و320 مكغ/لتر). بالنسبة للخلاصات المائية والميثانولية لـ A. santolina، على التوالي، لم يظهر الزيت الأساسي لـكل من A. fragrantissima وA. santolina و الخلاصة الكلوروفورمية لـ A. santolina فعالية مضادة للأكسدة. أظهرت الدراسة أن الخلاصات المائية والميثانولية لنبات A. fragrantissima تمتلك فعالية جيدة في كبح الجذور الحرة.
المراجع
El-Shazly A., Hafez S., and Wink M. Comparative study of the essential oils and extracts of Achillea fragrantissima (Forssk.) Sch. Bip. and Achillea santolina L. (Asteraceae) from Egypt. Pharmazie. 2003; 59(1):226-230.
Hassawi D., and Kharma A. Antimicrobial activity of some medicinal plants against Candida albicans. Journal of Biological Sciences. 2006; 6(1):109-114. DOI: https://doi.org/10.3923/jbs.2006.109.114
Patocka J., and Navratilova Z. Achillea fragrantissima: Pharmacology Review. Clinical Oncology. 2019; 4:1601.
Aqel H., Al-Charchafchi F., and Ghazzawi D. Biochemical, antibacterial, and antifungal activity of extracts from Achillea fragrantissima and evaluation of volatile oil composition. Der Pharmacia Sinica. 2012; 3(3):349-356.
Alsohaili S., and Al-fawwaz A. Composition and antimicrobial activity of Achillea fragrantissima essential oil using food model media. Food Model Media. 2014; 10:1857-7881.
Basma A., Eman H., Amany I., Amira W., Mohamed R., Mohamed H., Mahmoud E., and Samar A. Cytotoxic activity evaluation and molecular docking study of phenolic derivatives from Achillea fragrantissima (Forssk.) growing in Egypt. Medicinal Chemistry Research. 2017; 26(9):1-9. DOI: https://doi.org/10.1007/s00044-017-1918-6
Ahmed S., Ibrahim A., Habib E., Awad B., and Abd-Alhaseeb M. Antitumor activity of methoxylated flavonoids separated from Achillea fragrantissima extract in Ehrlich’s ascites carcinoma model in mice. Journal of Herbmed Pharmacology. 2020; 9(1):28-34. DOI: https://doi.org/10.15171/jhp.2020.04
Zaringhalam J., Akbari A., Tekieh E., Manaheji H., and Rezazadeh S. Achillea santolina reduces serum interleukin-6 level and hyperalgesia during complete Freund's adjuvant-induced inflammation in male Wister rats. Journal of Chinese Integrative Medicine. 2010; 8(12):1180-1189. DOI: https://doi.org/10.3736/jcim20101211
Ahmadi Z., Sattari M., Tabaraee B., and Bigdeli M. Identification of the constituents of Achillea santolina essential oil and evaluation of the anti-microbial effects of its extract and essential oil. AMUJ. 2011; 14(56):1-1.
Motavalizadehkakhky A., Shafaghat A., Ali Zamani H., Akhlaghi H., Mohammadhosseini M., Mehrzad J., and Ebrahimi Z. Compositions and the in vitro antimicrobial activities of the essential oils and extracts of two Achillea species from Iran. JMPR. 2013; 7(19):1280-1292.
Bader A., Flamini G., Cloni P., and Morelli I. Essential oil composition of Achillea santolina L. and Achillea biebersteinii Afan. collected in Jordan. Flavour Fragr. J. 2003; 18(1):36–38. DOI: https://doi.org/10.1002/ffj.1147
El-Darier S., Ahmed H., Kamal S., and Deif H. Conservation approach of Achillea santolina L. along the northwestern Mediterranean coastal region of Egypt: Phytomass and mineral content. Journal of Global Biosciences. 2014; 3(5):848-857.
Yazdanparast R., Ardestani A., and Jamshidi S. Experimental diabetes treated with Achillea santolina: Effect on pancreatic oxidative parameters. Journal of Ethnopharm. 2007; 112(1):13-18. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2007.01.030
Layadi I., Laiche A. T., and Tlili M. L. Medicinal plants used by traditional healers in the treatment of gastrointestinal disorders in Oued Souf Region (southeast of Algeria). Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024; 17(2):2024. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i2.1783
Maslov O., Komisarenko M., Kolisnyk S., and Derymedvid L. Evaluation of anti-inflammatory, antioxidant activities and molecular docking analysis of Rubus idaeus leaf extract. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024; 17(1):105–122. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i1.1808
Nuri P., Puspitasari E., Triatmoko B., Dianasari D., Muslichah S., and Nugraha S. Assessment of extraction methods effects on the biological activities (antioxidant and antiamylase) and chemistry (total phenolics and flavonoids) of Guazuma ulmifolia leaves. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024; 17(1):151–162. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i1.1171
Toncer O., Basbag S., Karaman S., Diraz E., and Basbag M. Chemical composition of the essential oils of some Achillea species growing wild in Turkey. IJAB. 2010; 12(4):527-530.
Baris O., Gulluce M., Sahin F., Ozer H., Kilic H., Ozkan H., Sokmen M., and Ozbek T. Biological activities of essential oil and methanol extract of Achillea biebersteinii Afan. (Asteraceae). Turk J Biol. 2006; 30(1):65-73.
Coelho M., Goncalves J., Alves V., and Moldao-Martins M. Antioxidant activity and phenolic content of extracts from different Pterospartum tridentatum populations growing in Portugal. International Congress on Engineering and Food. 2011; 11(1):2061-2062. DOI: https://doi.org/10.1016/j.profoo.2011.09.215
Abdeltaif S., SirElkhatim K., and Hassan A. Estimation of phenolic and flavonoid compounds and antioxidant activity of spent coffee and black tea waste for potential recovery and reuse in Sudan. Recycling. 2018; 3(27):1-9. DOI: https://doi.org/10.3390/recycling3020027
Siddiqua A., Premakumari K., Sultana R., Vithy, and Savitha. Antioxidant activity and estimation of total phenolic content of Muntigia calabura by colorimetry. Chemtech. 2010; 2(1):205-208.
Bozin B., Mimica-Dukic N., Bogavac M., Suvajdzic L., Simin N., Samojlik I., and Couladis M. Chemical composition, antioxidant and antibacterial properties of Achillea collina Becker ex Heimerl s.l. and A. pannonica Scheele essential oils. Molecules. 2008; 13(1):2058-2068. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules13092058
Tomsone L., Kruma Z., and Galoburda R. Comparison of different solvents and extraction methods for isolation of phenolic compounds from horseradish roots (Armoracia rusticana). World Academy of Science, Engineering and Technology. 2012; 64(1):903-908.
Durdevic J., Vasic S., Radojevic I., Delic G., and Comic L. Antibacterial, antibiofilm and antioxidant activity of Potamogeton nodosus Poir. extracts. Kragujevac J. Sci. 2014; 36(1):137-144. DOI: https://doi.org/10.5937/KgJSci1436137D
التنزيلات
منشور
كيفية الاقتباس
إصدار
القسم
