Senna alata الكيمياء النباتية، ومضادات الأكسدة، والتحليل، ومضادات الالتهاب، والسمية الخلوية، والنشاط المضاد للبكتيريا، وتحليل الكتلة الطيفية للغاز
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v17i3.2406الكلمات المفتاحية:
Senna alata، الفحص الكيميائي النباتي، النشاط المضاد للأكسدة، النشاط المضاد للالتهابات، النشاط المضاد للتخثر، النشاط السام للخلاياالملخص
الهدف: تتمتع الأعشاب الطبية في نيبال بأهمية ثقافية كبيرة ولها استخدامات متعددة. يعتبر نبات السنا ألاتا، وهو نبات ينتمي إلى عائلة البقوليات، ذو قيمة عالية لخصائصه الجمالية والعلاجية. وكان هدف الدراسة هو استخراج أوراق السنا ألاتا من خلال عدة نقعات بالمذيبات.
الطرق: لتقييم الكيمياء النباتية، ومستويات الفينول الكلية والفلافونويد، والخصائص المضادة للأكسدة في المختبر، والتأثيرات المضادة للالتهابات، والسمية الخلوية، والإمكانات المضادة للتخثر، والنشاط المضاد للبكتيريا، استخدمت هذه الدراسة مجموعة متنوعة من المنهجيات.
النتائج: تم تحديد القيم الاستخراجية للسنا ألاتا على أنها 1.58٪ و 0.78٪ و 5.92٪ في الهكسان، وأسيتات الإيثيل، والميثانول، على التوالي. كشف تحليل كروماتوغرافيا الغاز-مطياف الكتلة عن مركبات رئيسية مثل 3-ميثيل مانوسايد، ونيوفيتادين، وكامبيستيرول، وفيتامين هـ في مستخلص الأوراق. وقد أثبت الفحص الكيميائي النباتي النوعي محتوى التانين والكربوهيدرات والفلافونويدات والجليكوسيدات القلبية والجليكوسيدات والسابونين في مستخلص الميثانول. وكانت القيم الفينولية الكلية والفلافونويدية 46.36±4.5 ملغ GAE / جم و 480.4±3.055 QE / جم من المستخلص المجفف على التوالي. أظهر المستخلص أنشطة مضادة للأكسدة ومضادة للالتهابات بشكل ملحوظ، مع قيم IC50 29.81 و 9.93 على التوالي. وعلاوة على ذلك، فقد أظهر نشاطًا سامًا للخلايا بقيمة LC50 767.85 في اختبار الروبيان الملحي. من حيث النشاط التحللي للخثرة، أظهر المستخلص نسب انحلال الجلطات 7.89٪ و 10.13٪ عند تركيزات 10 ملغ / مل و 25 ملغ / مل على التوالي.
الاستنتاج: وفي الختام، أظهر المستخلص الميثانولي لنبات السنا ألاتا إمكانات علاجية، بما في ذلك التأثيرات المضادة للأكسدة والالتهابات والسمية الخلوية ومضادات التخثر والبكتيريا. كما أكد وجود العديد من المواد الكيميائية عن طريق تحليل كروماتوغرافيا الغاز-مطياف الكتلة على إمكانات النبات للاستخدام العلاجي.
المراجع
Toh S.C., Lihan S., Bunya S.R., Leong S.S. In vitro antimicrobial efficacy of Cassia alata (Linn.) leaves, stem, and root extracts against cellulitis causative agent Staphylococcus aureus. BMC Complement Med Ther. 2023;23(1):023-03914. DOI: https://doi.org/10.1186/s12906-023-03914-z
Parveen A., Parveen B., Parveen R., Ahmad S. Challenges and guidelines for clinical trial of herbal drugs. J Pharm Bioallied Sci. 2015;7(4):329-33. DOI: https://doi.org/10.4103/0975-7406.168035
Sagnia B., Fedeli D., Casetti R., Montesano C., Falcioni G., Colizzi V. Antioxidant and anti-inflammatory activities of extracts from Cassia alata, Eleusine indica, Eremomastax speciosa, Carica papaya and Polyscias fulva medicinal plants collected in Cameroon. PLoS ONE. 2014;9(8). DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0103999
Carmona F., Pereira A.M.S. Herbal medicines: old and new concepts, truths and misunderstandings. Revista Brasileira de Farmacognosia. 2013;23(2):379-85. DOI: https://doi.org/10.1590/S0102-695X2013005000018
Arabshomali A., Bazzazzadehgan S., Mahdi F., Shariat-Madar Z. Potential benefits of antioxidant phytochemicals in type 2 diabetes. Molecules. 2023;28(20):7209. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules28207209
Terao J. Potential role of quercetin glycosides as anti-atherosclerotic food-derived factors for human health. Antioxidants. 2023;12(2):258. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox12020258
Laila O., Murtaza I., Muzamil S., Ali S.I., Ali S.A., Paray B.A., et al. Enhancement of nutraceutical and anti-diabetic potential of fenugreek (Trigonella foenum-graecum). Sprouts with natural elicitors. Saudi Pharmaceutical Journal. 2023;31(1):1-13. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jsps.2022.11.001
Zhang Y.J., Gan R.Y., Li S., Zhou Y., Li A.N., Xu D.P., et al. Antioxidant Phytochemicals for the Prevention and Treatment of Chronic Diseases. Molecules. 2015;20(12):21138-56. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules201219753
Timothy S., Wazis C., Adati R., Maspalma I. Antifungal activity of aqueous and ethanolic leaf extracts of Cassia alata Linn. Journal of Applied Pharmaceutical Science. 2012;2(7):182-5. DOI: https://doi.org/10.7324/JAPS.2012.2728
Evans W.C. Trease & Evans Pharmacognosy (15Th Edition): Elsevier (A Divisionof Reed Elsevier India Pvt. Limited); 2002.
Yadav M., Chatterji S., Gupta S.K., Watal G. Preliminary phytochemical screening of six medicinal plants used in traditional medicine. Int J Pharm Pharm Sci. 2014;6(5):539-42.
Yermeydan Peker M.g., Koç OmK, Üzer Ae, Apak Ra. Folin–Ciocalteu Reagent-Loaded Acrylamide-Based Hydrogel Sensor for Antioxidant Capacity Measurement with the Molybdenum Green Method. ACS Applied Polymer Materials. 2024;6(3):1864-77. DOI: https://doi.org/10.1021/acsapm.3c02712
Syukri Y., Purwati R., Hazami N., Tahmid H.A., Fitria A. Standardization of specific and non-specific parameters of propolis extract as raw material for herbal product. EKSAKTA: Journal of Sciences and Data Analysis. 2020 Feb 13:36-43. DOI: https://doi.org/10.20885/EKSAKTA.vol1.iss1.art6
Makuch E., Nowak A., Günther A. The effect of cream and gel vehicles on the percutaneous absorption and skin retention of a new eugenol derivative with antioxidant activity. Frontiers in Pharmacology. 2021 Jun 25;12:658381. DOI: https://doi.org/10.3389/fphar.2021.658381
Shodehinde S.A., Oboh G. Antioxidant properties of aqueous extracts of unripe Musa paradisiaca on sodium nitroprusside induced lipid peroxidation in rat pancreas in vitro. Asian Pac J Trop Biomed. 2013;3(6):449-57. DOI: https://doi.org/10.1016/S2221-1691(13)60095-7
Blois M.S. Antioxidant determinations by the use of a stable free radical. Nature. 1958;181(4617):1199-200. DOI: https://doi.org/10.1038/1811199a0
Mannan A., Kawser M.J., Ahmed A.A., Islam N.N., Alam S.M., Emon M.A.E.K., et al. Assessment of antibacterial, thrombolytic and cytotoxic potential of Cassia alata seed oil. Journal of Applied Pharmaceutical Science. 2011(Issue):56-9.
Panjaitan R.G., Yuliana Y.G. Description of acute toxicity of ketepeng root extract (Senna alata (L.) Roxb). Pharmacognosy Journal. 2022;14(4). DOI: https://doi.org/10.5530/pj.2022.14.113
Sedighinia F., Afshar A.S., Asili J., Ghazvini K. Antibacterial activity of Glycyrrhiza glabra against oral pathogens: an in vitro study. Avicenna Journal of Phytomedicine. 2012;2(3):118.
Kumar S., Pandey A.K. Chemistry and biological activities of flavonoids: an overview. ScientificWorldJournal. 2013;29(162750). DOI: https://doi.org/10.1155/2013/162750
Pamulaparthi A., Prathap V.R., Banala M., Nanna R.S. Total Phenolic, Flavonoid contents and Antioxidant assays in leaf extracts of Senna alata (L.) Roxb. Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. 2016;8(9):981. DOI: https://doi.org/10.22159/ijcpr.2016v8i4.15280
Galanakis C., Goulas V., Tsakona S., Manganaris G., Gekas V. A knowledge base for the recovery of natural phenols with different solvents. Int J Food Prop. 2013;16:382-96. DOI: https://doi.org/10.1080/10942912.2010.522750
Russo D., Valentão P., Andrade P.B., Fernandez E.C., Milella L. Evaluation of Antioxidant, Antidiabetic and Anticholinesterase Activities of Smallanthus sonchifolius Landraces and Correlation with Their Phytochemical Profiles. Int J Mol Sci. 2015;16(8):17696-718. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms160817696
Aklima J., Mojumder S., Sikdar D. Total phenolic content, reducing power, antioxidative and anti-amylase activities of five Bangladeshi fruits. International Food Research Journal. 2014;21(1):119.
Yadav R., Agrawal M. Phytochemical Analysis of Some Medicinal Plants. Journal of Phytology. 2011;3(12):10-4.
Kumar S., Mishra A., Pandey A.K. Antioxidant mediated protective effect of Parthenium hysterophorus against oxidative damage using in vitro models. BMC Complementary and Alternative Medicine. 2013;13(1):120. DOI: https://doi.org/10.1186/1472-6882-13-120
Singh R., Singh S., Kumar S., Arora S. Evaluation of antioxidant potential of ethyl acetate extract/fractions of Acacia auriculiformis A. Cunn. Food Chem Toxicol. 2007;45(7):1216-23. DOI: https://doi.org/10.1016/j.fct.2007.01.002
Mishra A., Kumar S., Pandey A.K. Scientific validation of the medicinal efficacy of Tinospora cordifolia. ScientificWorldJournal. 2013;23(292934). DOI: https://doi.org/10.1155/2013/292934
Kumar S., Pandey A. Antioxidant, lipo-protective and antibacterial activities of phytoconstituents present in Solanum xanthocarpum root. International Review of Biophysical Chemistry. 2012;3(3):42-7.
Ogunjobi A., Abiala M. Antimicrobial activity of Senna alata and Phyllanthus amarus. Global Journal Of Pharmacology. 2013;7(2):198-202.
KC S., Pandey B., KC S., Gurung S., Gautam A. Anti-inflammatory, analgesic, and acute toxicity evaluation of Litchi chinensis seed extract in albino rat. Natural Resources for Human Health. 2021;1(1):30-5. DOI: https://doi.org/10.53365/nrfhh/141230
Pandey B., Thapa S., Kaundinnyayana A., Panta S. Hepatoprotective effects of Juglans regia on carbon tetrachloride‐induced hepatotoxicity: In silico/in vivo approach. Food Science & Nutrition. 2024. DOI: https://doi.org/10.1002/fsn3.4288
Pandey B., Baral R., Kaundinnyayana A., Panta S. Promising hepatoprotective agents from the natural sources: a study of scientific evidence. Egyptian Liver Journal. 2023;13(1):14. DOI: https://doi.org/10.1186/s43066-023-00248-w
El-Elimat T., Olimat S., Agha A.S.A., Aburjai A., Aburjai T. LC-MS Analysis of Secondary Metabolites of Asphodelus aestivus Brot.(Asphodelaceae) grown wild in Jordan. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024;17(2):333-43. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i2.1850
Naskar A., Dasgupta A., Acharya K. Antioxidant and cytotoxic activity of Lentinus fasciatus. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2023;16(1):72-81. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v16i1.1064
Jemal K., Sandeep B., Pola S. Phytochemical screening and in vitro antioxidant activity analysis of leaf and callus extracts of Allophylus serratus (ROXB) KURZ. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2022;15(1):51-69. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v15i1.291
التنزيلات
منشور
كيفية الاقتباس
إصدار
القسم
