دراسة المحتوى الكيميائي، وتأثيرات خفض مستوى الدهون و مستوى السكر في الدم، ومضادات الأكسدة لمستخلصات مختلفة من نبات اللافندر الفرنسي (Lavandula stoechas L) المزروع في فلسطين
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v18i2.2611الكلمات المفتاحية:
لافاندولاستويكاس، التركيب الكيميائي النباتي، الفينول، التانين، الفلافونويد، الجذور الحرة DPPH، الليباز البنكرياسي الخنزيري، ألفا أميليزالملخص
Lavandula stoechas L. (الخزامى الفرنسي؛ Lamiaceae) نوعٌ معروف من الخزامى في حوض البحر الأبيض المتوسط. يُستخدم على نطاق واسع في الطب التقليدي نظرًا لخصائصه في التئام الجروح، وخصائصه المضادة للتشنج، وخصائصه المقشعّة. ونتيجةً لذلك، تُعدّ هذه الدراسة الأولى التي تبحث في التركيب الكيميائي النباتي، ومحتويات الفينول، والتانين، والفلافونويد، والجذور الحرة DPPH، والليباز البنكرياسي الخنزيري، والقدرات المثبطة لـ α-amylase لأجزاء مختلفة من L. stoechas من فلسطين.
الطريقة: استُخدمت أساليب تلوين وترسيب محددة للفحص الكيميائي النباتي. حُدد محتوى الفينول الكلي باستخدام تقنية قياس الألوان Folin-Ciocalteu. واستُخدمت تقنية كلوريد الألومنيوم لتحديد مستوى الفلافونويد الكلي، بينما استُخدمت طريقة الفانيلين لتحديد العفص. وحُددت القيمة المضادة للأكسدة باستخدام تقنية DPPH. وفي الوقت نفسه، قُدِّرت التأثيرات المثبطة لليباز البنكرياسي الخنزيري وألفا أميليز باستخدام طريقتي بارا-نيتروفينيل بوتيرات (PNPB) وحمض 3،5-داينيتروساليسيليك (DNSA)، على التوالي.
النتائج: تشير النتائج إلى أن نسبة الميثانول في L. stoechas أظهرت أعلى محتوى إجمالي من الفلافونويد (18.028 ± 1.51 ملغ من QUE/غ) ومحتوى إجمالي ملحوظ من الفينول بلغ 127.13 ± 2.07 ملغ من GAE/غ، بينما أظهرت نسبة الأسيتون أعلى محتوى إجمالي من التانين (94.01 ± 1.08 ملغ من CAE/غ). علاوة على ذلك، من بين نسب L. stoechas، تتميز النسبة المائية بـ IC50 أعلى (47.86 ± 0.08 ميكروغرام/مل) مقارنةً بنسب الميثانول (66.06 ± 0.06 ميكروغرام/مل) والأسيتون (63.09 ± 0.29 ميكروغرام/مل) والهكسان (79.43 ± 0.1 ميكروغرام/مل). أظهرت جميع أجزاء النبات تأثيرات ضعيفة في تثبيط الليباز البنكرياسي الخنزيري وألفا أميليز مقارنةً بالضوابط الإيجابية المستخدمة.
الخلاصة: قدمت هذه الدراسة رؤى قيّمة حول التركيب الكيميائي النباتي والنشاط الحيوي لأجزاء مختلفة من L. stoechas. بناءً على النتائج المُحصل عليها، يُوصى باستكشاف وتحديد المركبات النشطة بيولوجيًا المسؤولة عن التأثيرات الملحوظة.
المراجع
Zuzarte M, Gonçalves M, Cavaleiro C, Cruz M, Benzarti A, Marongiu B, et al. Antifungal and anti-inflammatory potential of Lavandula stoechas and Thymus herba-barona essential oils. Industrial Crops and Products. 2013;44:97-103. DOI: https://doi.org/10.1016/j.indcrop.2012.11.002
Messaoud C, Chograni H, Boussaid M. Chemical composition and antioxidant activities of essential oils and methanol extracts of three wild Lavandula L. species. Natural product research. 2012;26(21):1976-84. DOI: https://doi.org/10.1080/14786419.2011.635343
Angioni A, Barra A, Coroneo V, Dessi S, Cabras P. Chemical composition, seasonal variability, and antifungal activity of Lavandula stoechas L. ssp. stoechas essential oils from stem/leaves and flowers. Journal of agricultural and food chemistry. 2006;54(12):4364-70. DOI: https://doi.org/10.1021/jf0603329
Bouyahya A, Et-Touys A, Abrini J, Talbaoui A, Fellah H, Bakri Y, et al. Lavandula stoechas essential oil from Morocco as novel source of antileishmanial, antibacterial and antioxidant activities. Biocatalysis and Agricultural Biotechnology. 2017;12:179-84. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bcab.2017.10.003
Algieri F, Rodriguez-Nogales A, Vezza T, Garrido-Mesa J, Garrido-Mesa N, Utrilla MP, et al. Anti-inflammatory activity of hydroalcoholic extracts of Lavandula dentata L. and Lavandula stoechas L. Journal of ethnopharmacology. 2016;190:142-58. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2016.05.063
Benabdelkader T, Zitouni A, Guitton Y, Jullien F, Maitre D, Casabianca H, et al. Essential oils from wild populations of Algerian Lavandula stoechas L.: composition, chemical variability, and in vitro biological properties. Chemistry & biodiversity. 2011;8(5):937-53. DOI: https://doi.org/10.1002/cbdv.201000301
Zhaleh M, Sohrabi N, Zangeneh MM, Zangeneh A, Moradi R, Zhaleh H. Chemical composition and antibacterial effects of essential oil of Rhus coriaria fruits in the west of Iran (Kermanshah). Journal of essential oil bearing plants. 2018;21(2):493-501. DOI: https://doi.org/10.1080/0972060X.2018.1462739
World Health Organization. Obesity and overweight Geneva: WHO; 2021 [Available from: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/obesity-and-overweight.
World Health Organization. Diabetes Geneva: WHO; 2023 [Available from: https://www.who.int/news-room/fact-sheets/detail/diabetes.
Pizzino G, Irrera N, Cucinotta M, Pallio G, Mannino F, Arcoraci V, et al. Oxidative stress: harms and benefits for human health. Oxidative medicine and cellular longevity. 2017;2017. DOI: https://doi.org/10.1155/2017/8416763
Eid AM, Jaradat N. Public knowledge, attitude, and practice on herbal remedies used during pregnancy and lactation in West Bank Palestine. Frontiers in pharmacology. 2020;11:46. DOI: https://doi.org/10.3389/fphar.2020.00046
Qneibi M, Jaradat N, Hawash M, Olgac A, Emwas N. Ortho versus meta chlorophenyl-2, 3-benzodiazepine analogues: synthesis, molecular modeling, and biological activity as AMPAR antagonists. ACS omega. 2020;5(7):3588-95. DOI: https://doi.org/10.1021/acsomega.9b04000
Sweileh WM, Arafat RT, Al-Khyat LS, Al-Masri DM, Jaradat NA. A pilot study to investigate over-the-counter drug abuse and misuse in Palestine. 2004.
Khutami C, Sumiwi SA, Khairul Ikram NK, Muchtaridi M. The effects of antioxidants from natural products on obesity, dyslipidemia, diabetes and their molecular signaling mechanism. International Journal of Molecular Sciences. 2022;23(4):2056. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms23042056
Rahman MM, Dhar PS, Anika F, Ahmed L, Islam MR, Sultana NA, et al. Exploring the plant-derived bioactive substances as antidiabetic agent: an extensive review. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2022;152:113217. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biopha.2022.113217
Unuofin JO, Lebelo SL. Antioxidant effects and mechanisms of medicinal plants and their bioactive compounds for the prevention and treatment of type 2 diabetes: an updated review. Oxidative medicine and cellular longevity. 2020;2020. DOI: https://doi.org/10.1155/2020/1356893
Organization WH. WHO guidelines on good agricultural and collection practices [GACP] for medicinal plants. Geneva: World Health Organization; 2003.
Qneibi M, Hanania M, Jaradat N, Emwas N, Radwan S. Inula viscosa (L.) Greuter, phytochemical composition, antioxidant, total phenolic content, total flavonoids content and neuroprotective effects. European Journal of Integrative Medicine. 2021;42:101291. DOI: https://doi.org/10.1016/j.eujim.2021.101291
Trease G, Evans W. Pharmacognosy. London: Baillier Tindall; 1983. 256-7.
Cheung L, Cheung PC, Ooi VE. Antioxidant activity and total phenolics of edible mushroom extracts. Food chemistry. 2003;81(2):249-55. DOI: https://doi.org/10.1016/S0308-8146(02)00419-3
Jaradat N, Hussen F, Al Ali A. Preliminary phytochemical screening, quantitative estimation of total flavonoids, total phenols and antioxidant activity of Ephedra alata Decne. J Mater Environ Sci. 2015;6(6):1771-8.
Jaradat N, Adwan L, K’aibni S, Shraim N, Zaid AN. Chemical composition, anthelmintic, antibacterial and antioxidant effects of Thymus bovei essential oil. BMC Complement Altern Med. 2016;16(1):418-24. DOI: https://doi.org/10.1186/s12906-016-1408-2
Sun B, Ricardo-da-Silva JM, Spranger I. Critical factors of vanillin assay for catechins and proanthocyanidins. Journal of agricultural and food chemistry. 1998;46(10):4267-74. DOI: https://doi.org/10.1021/jf980366j
Bustanji Y, Issa A, Mohammad M, Hudaib M, Tawah K, Alkhatib H, et al. Inhibition of hormone sensitive lipase and pancreatic lipase by Rosmarinus officinalis extract and selected phenolic constituents. J Med Plants Res. 2010;4(21):2235-42.
McCue PP, Shetty K. Inhibitory effects of rosmarinic acid extracts on porcine pancreatic amylase in vitro. Asia Pac J Clin Nutr. 2004;13(1):12-20.
Baliyan S, Mukherjee R, Priyadarshini A, Vibhuti A, Gupta A, Pandey RP, et al. Determination of antioxidants by DPPH radical scavenging activity and quantitative phytochemical analysis of Ficus religiosa. Molecules. 2022;27(4):1326. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules27041326
Kandi S, Charles AL. Statistical comparative study between the conventional DPPH spectrophotometric and dropping DPPH analytical method without spectrophotometer: Evaluation for the advancement of antioxidant activity analysis. Food chemistry. 2019;287:338-45. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2019.02.110
Pyrzynska K, Pękal A. Application of free radical diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) to estimate the antioxidant capacity of food samples. Analytical Methods. 2013;5(17):4288-95. DOI: https://doi.org/10.1039/c3ay40367j
Ceylan Y, Usta K, Usta A, Maltas E, Yildiz S. Evaluation of antioxidant activity, phytochemicals and ESR analysis of Lavandula stoechas. Acta Physica Polonica A. 2015;128(2B). DOI: https://doi.org/10.12693/APhysPolA.128.B-483
Ezzoubi Y, Bousta D, Lachkar M, Farah A. Antioxidant and anti-inflammatory properties of ethanolic extract of Lavandula stoechas L. from Taounate region in Morocco. Int J Phytopharm. 2014;5(1):21-6.
Amer, J., Ghanim, M., Salhab, A., Jaradat, N., Alqub, M., Rabayaa, M., Hallak, L., Abdulhai, T., Dwayat, S., Issa, L., & Dwikat, M. In vitro Analysis of the Anticancer and Antidiabetic Effects of Teucrium orientale Leaf Hydrophilic Extract Grown in Two Palestinian Geographic Areas. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2025;18(1): 77–89.
https://doi.org/10.35516/jjps.v18i1.2492 DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v18i1.2492
Karki, D., Pandey, B., Jha, P., Acharya, A., Khanal, D. P., Raut, B., & Panthi, S. Senna alata: Phytochemistry, Antioxidant, Thrombolytic, Anti-inflammatory, Cytotoxicity, Antibacterial activity, and GC-MS analysis. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024; 17(3): 549–566.
https://doi.org/10.35516/jjps.v17i3.2406 DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i3.2406
Al-Halaseh, L., Issa, R., Said, R., & Al-suhaimat, R. Antioxidant Activity, Phytochemical Screening, and LC/MS-MS Characterization of Polyphenol Content of Jordanian Habitat of Pennisetum Setaceum Aqueous Leaf Extract. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024;17(4): 706–716.
https://doi.org/10.35516/jjps.v17i4.2442 DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i4.2442







