تقييم المكونات الكيميائية النباتية النوعية والكمية والنشاط المضاد للأكسدة في المختبر لمستخلصات أوراق Aleuritopteris bicolor ودرنات Crinum amoenum وجذور Drynaria coronans

المؤلفون

  • Sindhu K.C. كلية الصحة والعلوم المرتبطة بها، كلية العلوم الصحية، جامعة بوخارا، بوخارا، نيبال
  • Atisammodavardhana Kaundinnyayana كلية الصحة والعلوم المرتبطة بها، كلية العلوم الصحية، جامعة بوخارا، بوخارا، نيبال
  • Prabhat Kumar Jha كلية الصحة والعلوم المرتبطة بها، كلية العلوم الصحية، جامعة بوخارا، بوخارا، نيبال
  • Sandesh Poudel كلية الصحة والعلوم المرتبطة بها، كلية العلوم الصحية، جامعة بوخارا، بوخارا، نيبال
  • Rajib Tiwari كلية الصحة والعلوم المرتبطة بها، كلية العلوم الصحية، جامعة بوخارا، بوخارا، نيبال
  • Ram Kishor Yadav كلية الصحة والعلوم المرتبطة بها، كلية العلوم الصحية، جامعة بوخارا، بوخارا، نيبال
  • sistu K.C. أكاديمية باتان للعلوم الصحية، لاليتبور، جامعة كاتماندو نيبال
  • Kushal subedi كلية الصحة والعلوم المرتبطة بها، كلية العلوم الصحية، جامعة بوخارا، بوخارا، نيبال

DOI:

https://doi.org/10.35516/jjps.v18i2.2691

الكلمات المفتاحية:

تحليل كيميائي نباتي، السمية الخلوية، أوراق Aleuritopteris bicolor، درنات Crinum amoenum، جذور Drynaria coronans

الملخص

نظرًا للإمكانات العلاجية لمركبات النباتات كمضادات للأكسدة، هناك اهتمام متزايد باستخدامها في علاج أو الوقاية من الأمراض. يتم استخدام نباتات مثل Aleuritopteris bicolor (AB)، وCrinum amoenum (CA)، وDrynaria coronans (DC) في الطب العشبي التقليدي في نيبال. تهدف هذه الدراسة إلى تقييم المكونات الكيميائية النباتية النوعية والكمية إلى جانب فعالية مضادات الأكسدة في مستخلصات أوراق AB ودرنات CA وجذور DC.تم تقييم التحليل الكيميائي النوعي باستخدام تقنية كروماتوغرافيا الطبقة الرقيقة (TLC) والاختبارات الكيميائية القياسية، وتم إجراء TLC على صفائح سيليكا جل F254 باستخدام نظام مذيب من الكلوروفورم:ميثانول:ماء (6:4:1)، وتمت ملاحظة الصفائح تحت الأشعة فوق البنفسجية (254 و365 نانومتر) وتطويرها باستخدام كلوريد الحديديك 1%، حمض الكبريتيك 10%، ومحلول DPPH لنشاط مضادات الأكسدة. أُجري التحليل الكمي لمحتوى الفلافونويد والفينولات باستخدام كاشف كلوريد الألمنيوم وكاشف فولين-سيوكالتي، على التوالي. تم قياس نشاط مضادات الأكسدة باستخدام اختبار DPPH للجذور الحرة. أظهرت النتائج أن الأنواع المختارة تحتوي على مركبات الفلافونويد والفينولات والصابونين والعفص، وكان لأوراق AB أعلى محتوى من الفلافونويد (398.861 ± 6.94 ملغم كيرسيتين/غرام من المستخلص الجاف) وأظهرت أيضًا أقوى نشاط مضاد للأكسدة (IC50 = 3.233 ميكروغرام/مل).تُبرز النتائج إمكانات مستخلص أوراق AB للاستخدام الطبي المستقبلي.

المراجع

Ohikhena F.U., Wintola O.A., and Afolayan A.J. Quantitative phytochemical constituents and antioxidant activities of the mistletoe, Phragmanthera capitata (Sprengel) Balle extracted with different solvents. Pharmacognosy Res. 2018; 10(1):16–23. DOI: https://doi.org/10.3923/rjb.2017.23.31

Zhang Y.J., Gan R.Y., Li S., Zhou Y., Li A.N., Xu D.P., et al. Antioxidant phytochemicals for the prevention and treatment of chronic diseases. Molecules. 2015; 20(12):21138–21156. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules201219753

Kunwar R.M., Mahat L., Acharya R.P., and Bussmann R.W. Medicinal plants, traditional medicine, markets and management in far-west Nepal. J. Ethnobiol. Ethnomed. 2013; 9(1):24. DOI: https://doi.org/10.1186/1746-4269-9-24

Oyebode O., Kandala N.B., Chilton P.J., and Lilford R.J. Use of traditional medicine in middle-income countries: a WHO-SAGE study. Health Policy Plan. 2016; 31(8):984–991. DOI: https://doi.org/10.1093/heapol/czw022

Jemal K., Sandeep B.V., and Pola S. Phytochemical screening and in vitro antioxidant activity analysis of leaf and callus extracts of Allophylus serratus (ROXB) KURZ. Jordan J. Pharm. Sci. 2022; 15(1):51–69. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v15i1.291

Ekor M. The growing use of herbal medicines: issues relating to adverse reactions and challenges in monitoring safety. Front. Pharmacol. 2014; 4:177. DOI: https://doi.org/10.3389/fphar.2013.00177

Adhikari M., Thapa R., Kunwar R.M., Devkota H.P., and Poudel P. Ethnomedicinal uses of plant resources in the Machhapuchchhre Rural Municipality of Kaski District, Nepal. Medicines (Basel). 2019; 6(2):69. DOI: https://doi.org/10.3390/medicines6020069

Ojha R. and Devkota H. Edible and medicinal pteridophytes of Nepal: a review. Ethnobot. Res. Appl. 2021; 22:1–16. DOI: https://doi.org/10.32859/era.22.16.1-16

Rai R. and Singh N.B. Medico-ethnobiology in Rai community: a case study from Baikunthe Village Development Committee, Bhojpur, Eastern Nepal. J. Inst. Sci. Technol. 2015; 20:127. DOI: https://doi.org/10.3126/jist.v20i1.13935

Subba B., Srivastav C., and Kandel R.C. Scientific validation of medicinal plants used by Yakkha community of Chanuwa VDC, Dhankuta, Nepal. SpringerPlus. 2016; 5(1):155. DOI: https://doi.org/10.1186/s40064-016-1821-5

Kediso T.E., Tolessa T., Getachew F., Makonnen E., and Seifu D. Effect of 70% ethanol extract and its solvent fractions of Artemisia afra (Jacq. Ex Willd.) against pentylenetetrazole-induced seizure in mice. Evid. Based Complement. Alternat. Med. 2021; 2021:6690965. DOI: https://doi.org/10.1155/2021/6690965

Giri S., Giri U., Subedi K., Magar K.T., Pant S., and Joshi K.R. Thin Layer Chromatography (TLC) based chemical profiling and antioxidant activity of selected Nepalese medicinal plants. J. Health Allied Sci. 2020; 10(2):15–22. DOI: https://doi.org/10.37107/jhas.158

Pant D.R., Pant N.D., Saru D.B., Yadav U.N., and Khanal D.P. Phytochemical screening and study of antioxidant, antimicrobial, antidiabetic, anti-inflammatory and analgesic activities of extracts from stem wood of Pterocarpus marsupium Roxburgh. J. Intercult. Ethnopharmacol. 2017; 6(2):170–176. DOI: https://doi.org/10.5455/jice.20170403094055

Pękal A. Evaluation of aluminium complexation reaction for flavonoid content assay. Food Anal. Methods. 2014; 7:1776–1782. DOI: https://doi.org/10.1007/s12161-014-9814-x

Blainski A., Lopes G.C., and de Mello J.C.P. Application and analysis of the Folin Ciocalteu method for the determination of the total phenolic content from Limonium brasiliense L. Molecules. 2013; 18(6):6852–6865. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules18066852

Sowndhararajan K. and Kang S.C. Free radical scavenging activity from different extracts of leaves of Bauhinia vahlii Wight & Arn. Saudi J. Biol. Sci. 2013; 20(4):319–325. DOI: https://doi.org/10.1016/j.sjbs.2012.12.005

Sofowora A., Ogunbodede E. and Onayade A. The role and place of medicinal plants in the strategies for disease prevention. Afr. J. Tradit. Complement. Altern. Med. 2013; 10(5):210–229. DOI: https://doi.org/10.4314/ajtcam.v10i5.2

Ikram L., Laiche A.T. and Tlili M.L. Medicinal plants used by traditional healers in the treatment of gastrointestinal disorders in Oued Souf Region (southeast of Algeria). Jordan J. Pharm. Sci. 2024; 17(2):225–241. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i2.1783

Yeshi K., Crayn D., Ritmejerytė E. and Wangchuk P. Plant secondary metabolites produced in response to abiotic stresses have potential application in pharmaceutical product development. Molecules. 2022; 27(1):313. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules27010313

Kagan I.A. and Flythe M.D. Thin-layer chromatographic (TLC) separations and bioassays of plant extracts to identify antimicrobial compounds. J. Vis. Exp. 2014; (85):51411. DOI: https://doi.org/10.3791/51411-v

Sardi V.F., Astika A., Jalius I.M. and Ismed F. Quantification of mangiferin from the bioactive fraction of mango leaves (Mangifera indica L.) and evaluation of wound-healing potential. Jordan J. Pharm. Sci. 2023; 16(3):595–606. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v16i3.652

Khanal L.N., Sharma K.R., Pokharel Y.R. and Kalauni S.K. Assessment of phytochemical, antioxidant and antimicrobial activities of some medicinal plants from Kaski District of Nepal. Am. J. Plant Sci. 2020; 11(9):1383–1397. DOI: https://doi.org/10.4236/ajps.2020.119099

Pandey L.K. and Sharma K.R. Analysis of phenolic and flavonoid content, α-amylase inhibitory and free radical scavenging activities of some medicinal plants. Sci. World J. 2022; 2022:4000707. DOI: https://doi.org/10.1155/2022/4000707

Tiwari R., Parajuli N., Pahari A., Gurung S., Baral R., Shrestha R. et al. Phytochemical screening, free radical scavenging and in-vitro antibacterial activity of ethanolic extracts of selected medicinal plants of Nepal and effort towards formulation of antibacterial cream from the extracts. Int. J. Herb. Med. 2021; 9:39–47.

Rahman M.M., Islam M.B., Biswas M. and Khurshid Alam A.H.M. In vitro antioxidant and free radical scavenging activity of different parts of Tabebuia pallida growing in Bangladesh. BMC Res. Notes. 2015; 8(1):621. DOI: https://doi.org/10.1186/s13104-015-1618-6

Aykul S. and Martinez-Hackert E. Determination of half-maximal inhibitory concentration using biosensor-based protein interaction analysis. Anal. Biochem. 2016; 508:97–103. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ab.2016.06.025

Cao H., Chai T.T., Wang X., Morais-Braga M.F.B., Yang J.H., Wong F.C. et al. Phytochemicals from fern species: potential for medicine applications. Phytochem. Rev. 2017; 16(3):379–440. DOI: https://doi.org/10.1007/s11101-016-9488-7

Jarial R., Shard A., Thakur S., Sakinah M., Zularisam A.W., Rezania S. et al. Characterization of flavonoids from fern Cheilanthes tenuifolia and evaluation of antioxidant, antimicrobial and anticancer activities. J. King Saud Univ. Sci. 2018; 30(4):425–432. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jksus.2017.04.007

التنزيلات

منشور

2025-06-25

كيفية الاقتباس

K.C., S., Kaundinnyayana, A. ., Kumar Jha, P., Poudel, S. ., Tiwari, R., Kishor Yadav, R. ., K.C., sistu, & subedi, K. . (2025). تقييم المكونات الكيميائية النباتية النوعية والكمية والنشاط المضاد للأكسدة في المختبر لمستخلصات أوراق Aleuritopteris bicolor ودرنات Crinum amoenum وجذور Drynaria coronans. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences, 18(2), 555–565. https://doi.org/10.35516/jjps.v18i2.2691

إصدار

القسم

Articles