استكشاف الأنشطة المضادة لمرض السكر ومدرة للبول لنباتي Lumnitzera racemosa وEclipta alba من خلال دراسة الالتحام الجزيئي
DOI:
https://doi.org/10.35516/jjps.v18i1.2752الكلمات المفتاحية:
Lumnitzera racemosa، Eclipta alba، نشاط مدر للبول، نشاط مضاد لمرض السكر، دراسة الالتحام الجزيئيالملخص
كان الهدف من الدراسة الحالية هو النظر في أوراق Lumnitzera Racemosa العائلة: Combretaceae والجزء الهوائي من Eclipta alba (العائلة: Asteraceae) لمكوناتها الكيميائية النباتية والأنشطة الدوائية المختارة (مدر للبول ومضاد لمرض السكر). تستخدم الأدوية المدرة للبول لعلاج ارتفاع ضغط الدم. يعد مرض السكري وارتفاع ضغط الدم من الأمراض الشائعة لدى مرضى الشيخوخة وكان هدفنا هو استكشاف النباتات الطبية في سونداربانس لإيجاد علاج لهذه الأمراض. أظهرت الدراسة الكيميائية النباتية لنبات L. Racemosa و E. alba وجود الكربوهيدرات والجليكوسيدات والسكر المختزل والعفص والفلافونويد والقلويدات والبروتينات والصمغ والمنشطات والسابونين والمواد الكيميائية الحمضية. الصمغ، قلويد، الستيرويد، وتيربينويد. تمت تجزئة مستخلص النباتين اعتمادًا على القطبية باستخدام ن-هكسان (غير قطبي)، وخلات الإيثيل (قطبي متوسط) والماء (قطبي). في اختبار نشاط مدر البول باستخدام فئران ألبينو سويسرية، لم يُظهر أي من أجزاء L. Racemosa وE. alba نشاطًا مدرًا للبول، لكن n-hexane 500 mg/kg من E. alba أظهر نشاطًا مدرًا للبول قليلًا مقارنة بالفروسيميد القياسي. تم استخدام الفئران البيضاء السويسرية لتقييم اختبار تحمل الجلوكوز عن طريق الفم (OGTT) من أجل قياس النشاط المضاد لمرض السكر. في OGTT، أظهر جزء الماء 500 ملغم/كغم من L. Racemosa وE. alba نشاطًا لخفض نسبة الجلوكوز في الدم مقارنةً بـ Glibenclamide القياسي. لقد أجرينا دراسة سيليكو بين ثمانية (08) مركبات من L. Racemosa ضد بروتين 1V4S (الجلوكوكيناز البشري). بالمقارنة مع جليبينكلاميد الكلاسيكي (-8.5 كيلو كالوري/مول)، كان للميريسيترين درجة إرساء جيدة تبلغ -8.4 كيلو كالوري/مول. بناءً على هذه النتائج، افترضنا أن L. Racemosa وE. alba يمكن أن يكونا مصدرًا محتملاً للعلاجات العلاجية لارتفاع ضغط الدم وارتفاع السكر في الدم
المراجع
Manohar S.M. A Review of the Botany, Phytochemistry, and Pharmacology of Mangrove Lumnitzera racemosa Willd. Pharmacogn Rev. 2021; 15(30):107-116. DOI: 10.5530/phrev.2021.15.13. DOI: https://doi.org/10.5530/phrev.2021.15.13
Darwish A.G.G., Samy M.N., Sugimoto S., Otsuka H., Abdel-Salam H., Issa M.I., Shaker E.S., Matsunami K. Bioactive Compounds from the Leaves of Lumnitzera racemosa Against Acetaminophen-Induced Liver Damage in vitro. J. Arid Land Stud. 2016; 26(3):183-186. DOI: 10.14976/jals.26.3_183.
Molligoda S.P., Madushani G.H., Jayangani R.M.M., Hewageegana S.P. Pharmacological Activities of Eclipta alba (L.) Hassk. (Bhringaraja): A Review. GSC Adv. Res. Rev. 2023; 15(2):85-97.
DOI: 10.30574/gscarr.2023.15.2.0150. DOI: https://doi.org/10.30574/gscarr.2023.15.2.0150
Evans W.C. Trease and Evan's Textbook of Pharmacognosy. 13th ed. Cambridge University Press; 1989. p. 546.
Joy K.L., Kuttan R. Anti-Diabetic Activity of Picrorrhiza kurroa Extract. J. Ethnopharmacol. 1999; 67(2):143-148. DOI: 10.1016/s0378-8741(98)00243-8. DOI: https://doi.org/10.1016/S0378-8741(98)00243-8
Bnouham M., Merhfour F.Z., Ziyyat A., Mekhfi H., Aziz M., Legssyer A. Antihyperglycemic Activity of the Aqueous Extract of Urtica dioica. Fitoterapia. 2003; 74(7-8):677-681. DOI: 10.1016/s0367-326x(03)00182-5. DOI: https://doi.org/10.1016/S0367-326X(03)00182-5
Mamun M., Billah M., Ashek M., Ahasan M., Hossain M., Sultana T. Evaluation of Diuretic Activity of Ipomoea aquatica (Kalmisak) in Mice Model Study. J. Med. Sci. 2003; 3(5):395-400. DOI: 10.3923/jms.2003.395.400. DOI: https://doi.org/10.3923/jms.2003.395.400
Mekonnen T., Urga K., Engidawork E. Evaluation of the Diuretic and Analgesic Activities of the Rhizomes of Rumex abyssinicus Jacq in Mice. J. Ethnopharmacol. 2010; 127:433-439. DOI: 10.1016/j.jep.2009.10.020. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jep.2009.10.020
Dallakyan S., Olson A.J. Small-Molecule Library Screening by Docking with PyRx. Methods Mol. Biol. 2015; 1263:243-250. DOI: 10.1007/978-1-4939-2269-7_19. DOI: https://doi.org/10.1007/978-1-4939-2269-7_19
Shaker B., Ahmad S., Lee J., Jung C., Na D. In Silico Methods and Tools for Drug Discovery. Comput. Biol. Med. 2021; 147:104851.
DOI: 10.1016/j.compbiomed.2021.104851. DOI: https://doi.org/10.1016/j.compbiomed.2021.104851
Yu S.Y., Wang S.W., Hwang T.L., Wei B.L., Su C.J., Chang F.R., Cheng Y.B. Components from the Leaves and Twigs of Mangrove Lumnitzera racemosa with Anti-Angiogenic and Anti-Inflammatory Effects. Mar. Drugs 2018; 16:404. DOI: 10.3390/md16110404. DOI: https://doi.org/10.3390/md16110404
Karmakar U.K., Akter S., Sultana S. Investigation of Antioxidant, Analgesic, Antimicrobial, and Anthelmintic Activity of the Aerial Parts of Paederia foetida (Family: Rubiaceae). Jordan J. Pharm. Sci. 2020; 13(2):131-147.
Sengupta R., Sheorey S.D., Hinge M.A. Analgesic and Anti-Inflammatory Plants: An Updated Review. Int. J. Pharm. Sci. Rev. Res. 2012; 12(2):114-119.
Kumar D., Kumar S., Singh J., Vashistha B., Singh N. Free Radical Scavenging and Analgesic Activities of Cucumis sativus L. Fruit Extract. J. Young Pharm. 2010; 2(4):365-368. DOI: 10.4103/0975-1483.71627. DOI: https://doi.org/10.4103/0975-1483.71627
El-Sayed A.M., Abdel-Ghani E.M., Tadros S.H., Soliman F.M. Pharmacognostical and Biological Exploration of Scaevola taccada (Gaertn.) Roxb. Grown in Egypt. Jordan J. Pharm. Sci. 2020; 13(4):435-455.
Ammal S.M.A., Sudha S., Rajkumar D., Baskaran A., Krishnamoorthy G., Anbumozhi M.K. In Silico Molecular Docking Studies of Phytocompounds from Coleus amboinicus Against Glucokinase. Cureus 2023; 15(2):e34507. DOI: 10.7759/cureus.34507. DOI: https://doi.org/10.7759/cureus.34507
Wilson J.E. Isozymes of Mammalian Hexokinase: Structure, Subcellular Localization, and Metabolic Function. J. Exp. Biol. 2003; 206:2049-2057. DOI: 10.1242/jeb.00241. DOI: https://doi.org/10.1242/jeb.00241
Ferre T., Riu E., Bosch F., Valera A. Evidence from Transgenic Mice That Glucokinase is Rate Limiting for Glucose Utilization in the Liver. FASEB J. 1996; 10:1213-1218. DOI: 10.1096/fasebj.10.10.8751724. DOI: https://doi.org/10.1096/fasebj.10.10.8751724
Karmakar U.K., Paul A., Kundu P., Paul P.P. Exploration of Anthelmintic, Blood Coagulant, Diuretic, and Laxative Activities of Different Solvent Fractions of Flagellaria indica Leaves. Jordan J. Pharm. Sci. 2023; 16(3):655-670. DOI: 10.35516/jjps.v16i3.976. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v16i3.976
Al Disi S.S., Anwar M.A., Eid A.H. Anti-Hypertensive Herbs and Their Mechanisms of Action: Part I. Front. Pharmacol. 2016; 6:323.
DOI: 10.3389/fphar.2015.00323. DOI: https://doi.org/10.3389/fphar.2015.00323
Hock F.J. Drug Discovery and Evaluation: Pharmacological Assays. Springer; 2016:837–841. DOI: https://doi.org/10.1007/978-3-319-05392-9
Sam R., Ives H.E., Pearce D. Diuretic Agents. In: Basic and Clinical Pharmacology. McGraw Hill; 2018:254–274.
Cadwallader A.B., De La Torre X., Tieri A., Botrè F. The Abuse of Diuretics as Performance-Enhancing Drugs and Masking Agents in Sport Doping: Pharmacology, Toxicology, and Analysis. Br. J. Pharmacol. 2010; 161(1):1–16. DOI: 10.1111/j.1476-5381.2010.00789.x. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1476-5381.2010.00789.x
Jackson E.K. Drugs Affecting Renal Excretory Function. In: Goodman & Gilman’s The Pharmacological Basis of Therapeutics. New York: McGraw Hill; 2018:445–470.
Mishra S., Sharma S.K., Yadav J., Kasana B. A Review on How Exactly Diuretic Drugs Work in Our Body. J. Drug Deliv. Ther. 2013; 3(5):115–120. DOI: https://doi.org/10.22270/jddt.v3i5.594
Smith H. Diuretics: A Review for the Pharmacist. S. Afr. Pharm. J. 2014; 81(7):18–21.
التنزيلات
منشور
كيفية الاقتباس
إصدار
القسم
