إنبات بذور الترمس البري (Lupinus varius L.) في الأردن تحت طرق كسر سكون مختلفة
DOI:
https://doi.org/10.35516/JJAS.3744الكلمات المفتاحية:
التخديش الكيميائي، نسبة الإنبات، التخديش الميكانيكي، طور السكون، طول الجذير الوتديالملخص
يعتبر الترمس البري (Lupinus varius L.) نباتا حوليا ينتشر في منطقة حوض البحر الأبيض المتوسط والتي تعتبر موطنه الأصلي. قليلة هي الدراسات التي إهتمت بدراسة إنبات بذور الترمس البري في منطقته من حيث كسر طور سكون البذور خصوصا تلك المتعلقة بإستخدام درجات الحرارة المختلفة. تعتبر عملية كسر طور السكون مهمة جدا حيث أنها تمكن مربي المحاصيل من إنتاج وتطوير أصناف أكثر مرونة في مواجهة التغيرات المناخية المختلفة. تهدف هذه الدراسة إلى تقييم تأثير طريقة كسر طور السكون في نبات الترمس البري بإستخدام معاملات مختلفة تشمل الماء الساخن (80 م°)، التخديش الكيميائي ((H2SO4،التخدش الميكانيكي، والتنضيد ) 5 م°( على إنبات البادرات والجذير لبذور الترمس البري تحت أربع درجات حرارة مختلفة (10، 14، 18 و22 م°) لمدة 15 يوم لكل درجة حرارة في الحاضنة.
في هذه الدراسة أستخدم التصميم العشوائي الكامل بثلاثة مكررات. أظهرت نتائج هذه التجربة أن التخديش الميكانيكي على درجة حرارة 22 م° لمدة 15 يومًا كان أفضل طريقة في عملية كسر طور السكون وكان ذلك واضحا من خلال زيادة إنبات البادرات (93.3%) و زيادة طول الجذر الوتدي (7.6 ملم) لنبات الترمس. بالمقابل في معاملة التخديش الكيميائي تم تسجيل أدنى إنبات للبادرات (13.1 – 13.3%) عند درجة حرارة 10م°.أوضحت هذه الدراسة أن التخديش الميكانيكي هو الطريقة المثالية لكسر طور السكون في بذور الترمس البري.
التنزيلات
المراجع
Ačko, K. D., & Flajšman, M. (2023). Production and Utilization of Lupinus spp. IntechOpen. https://doi.org/10.5772/intechopen.110227
Ahmed, A. A., Abdel-Wahab, E. I., Ghareeb, Z. E., & Ashrei, A. A. (2023). Morphological characterization and agronomic traits of some lupine genotypes. Egyptian Journal of Agricultural Research, 101(2), 477-496. https://doi.org/10.21608/ejar.2023.193896.1349
Al-Ghzawi, A. L. A., Khalaf, Y. B., Al-Ajlouni, Z. I., AL-Quraan, N. A., Musallam, I., & Hani, N. B. (2018). The effect of supplemental irrigation on canopy temperature depression, chlorophyll content, and water use efficiency in three wheat (Triticum aestivum L. and T. durum Desf.) varieties grown in dry regions of Jordan. Agriculture, 8 (5), 67. https://doi.org/10.3390/agriculture8050067
Al-Ghzawi, A. L. A., Al-Ajlouni, Z. I., Sane, K. O. A., Bsoul, E. Y., Musallam, I., Khalaf, Y. B., Al-Tawaha, A., Aldwairi Y., & Al-Saqqar, H. (2019). Yield stability and adaptation of four spring barley (Hordeum vulgare L.) cultivars under rainfed conditions. Research on Crops, 20 (1), 10-18. https://doi.org/10.31830/2348-7542.2019.002
Al-Ghzawi, A. L. A., Al Khateeb, W., Rjoub, A., Al-Tawaha, A. R. M., Musallam, I., & Al Sane, K. O. (2019). Lead toxicity affects growth and biochemical content in various genotypes of barley (Hordeum vulgare L.). Bulgarian Journal of Agricultural Science, 25(1), 55-61.
Al-Eisawi D. (1982). List of Jordan vascular plants. Botanische Staatssammlung München,18, 79-182. Ammn, Jordan.
Asaadi, A. M., Heshmati, G., & Dadkhah, A. (2015). Effects of different treatments to stimulate seed germination of Salsola arbusculiformis Drob. Ecopersia, 3(3), 1077-1088. https://ecopersia.modares.ac.ir/article-24-9963-en.html
Bermúdez-Torres, K., Ferval, M., & Legal, L. (2015). Lupinus species in Central Mexico in the Era of Climate Change: adaptation, migration, or extinction?. Climate Change Impacts on High-Altitude Ecosystems, 215-228. https://doi.org/10.1007/978-3-319-12859-7_8
Cowling, W. A., Bevan, J. B., & Mario E. T. (1998). Lupin. Lupinus L. Promoting the conservation and use of underutilized and neglected crops. 23. Institute of Plant Genetics and Crop Plant Research, Gatersleben/International Plant Genetic Resources Institute, Institute of Plant Genetics and Crop Plant Research (IPGRI) via delle sette Chiese, (pp. 1-100). Rome, Italy. https://www.researchgate.net/publication/287391705_Lupin_Lupinus_spp_Promoting_the_conservation_and_use_of_underutilized_and_neglected_crops_23
Drummond, C. S., Eastwood, R. J., Miotto, S. T., & Hughes, C. E. (2012). Multiple continental radiations and correlates of diversification in Lupinus (Leguminosae): testing for key innovation with incomplete taxon sampling. Systematic Biology, 61(3), 443-460. https://doi.org/10.1093/sysbio/syr126
Geneve R.L. (2003). Impact of temperature on seed dormancy. HortScience, 38, 336-341. https://doi.org/10.21273/hortsci.38.3.336
Greipsson, S., & El-Mayas, H. (2003). Seed set, germination, and seedling establishment in Lupinus nootkatensis. Journal of New Seeds, 5 (4), 1-15. https://doi.org/10.1300/J153v05n04_01
Halvorson, J. J., Smith, J. L., & Kennedy, A. C. (2005). Lupine effects on soil development and function during early primary succession at Mount St. Helens. In Ecological responses to the 1980 eruption of Mount St. Helens (pp. 243-254). Springer. https://doi.org/10.1007/0-387-28150-9_17
Hatzilazarou, S., Pipinis, E., Kostas, S., Stagiopoulou, R., Gitsa, K., Dariotis, E., ... & Krigas, N. (2023). Influence of temperature on seed germination of five wild-growing Tulipa species of Greece associated with their ecological profiles: Implications for conservation and cultivation. Plants, 12 (7), 1574. https://doi.org/10.3390/ plants12071574
Hi̇looğlu, M., Sözen, E., Yücel, E., & Kandemir, A. (2018). Chemical applications, scarification and stratification effects on seed germination of rare endemic Verbascum calycosum Hausskn. ex Murb.(Scrophulariaceae). Notulae Botanicae Horti Agrobotanici Cluj-Napoca, 46 (2), 376-380. https://doi.org/10.15835/nbha46210746
Jaganathan, G. K. (2022). Unravelling the paradox in physically dormant species: elucidating the onset of dormancy after dispersal and dormancy-cycling. Annals of Botany, 130 (2), 121-129. https://doi.org/10.1093/aob/mcac084
Jones, C., Jensen, S., & Stevens, M. (2010). An evaluation of seed scarification methods of four native Lupinus species. In: Pendleton, Rosemary; Meyer, Susan; Schultz, Bitsy, eds. Conference Proceedings: Seed Ecology III-The Third International Society for Seed Science Meeting on Seeds and the Environment-" Seeds and Change"; June 20-June 24, 2010; Salt Lake City, Utah, USA. Albuquerque, NM: US Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station. p. 74-75. https://research.fs.usda.gov/treesearch/36964
Karaguzel, O. S. M. A. N., Cakmakci, S. A. D. I. K., Ortacesme, V. E. L. I., & Aydinoglu, B. I. L. A. L. (2004). Influence of seed coat treatments on germination and early seedling growth of Lupinus varius L. Pakistan Journal of Botany 36 (1), 65-74.
Knecht, K. T., Sanchez, P., & Kinder, D. H. (2020). Lupine Seeds (Lupinus spp.): history of use, use as an antihyperglycemic medicinal, and use as a food plant. In Nuts and Seeds in Health and Disease Prevention (pp. 393-402). Elsevier. https://doi.org/10.1016/b978-0-12-818553-7.00027-9
Knight, R. (2012). Linking Research and Marketing Opportunities for Pulses in the 21st Century: Proceedings of the Third International Food Legumes Research Conference (Vol. 34). Springer Science & Business Media. https://doi.org/10.1007/978-94-011-4385-1
Mahfouze, S. A., Mahfouze, H. A., Dalia M. F. Mubarak, D. M. F., & Esmail, R.M. (2015). Evaluation of Lupinus albus L. as a forage crop under rainfed conditions in Jordan, Jordan Journal of Biological Sciences, 11(1), 47-56.
Marrs RH, Owen LD, Roberts RD, Bradshaw AD. 1982. Tree Lupin (Lupinus arboreus Sims): an ideal nurse crop for land restoration and amenity plantings. Arboricultural Journal: The International Journal Of Urban Forestry 6, 161–174. https://doi.org/10.1080/03071375.1982.9746567
Navarro, A., Fos, S., Laguna, E., Durán, D., Rey, L., Rubio-Sanz, L., et al. (2014). Conservation of endangered Lupinus mariae-josephae in its natural habitat by inoculation with selected, native Bradyrhizobium strains. Plos One, 9:e102205. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0102205
Ogtr. (2021). The Biology of Lupinus L. (lupin or lupine). Office of the Gene Technology Regulator, Australian Government, Canberra, P. 63.
Paim, L. P., Avrella, E. D., Horlle, J. C. A., Fior, C. S., Lazarotto, M., & Brunes, A. P. (2021). Response of Lupinus bracteolaris seeds to pre-germinative treatments and experimental conditions. Revista de Investigación Agraria y Ambiental. Bogotá, Colombia, 12 (2), 51-66. https://doi.org/10.22490/21456453.4278
Pantsyreva, H. V. (2019). Morphological and ecological-biological evaluation of the decorative species of the genus Lupinus L. Ukrainian Journal of Ecology, 9 (3), 74-77. https://doi.org/10.15421/2019_711
Planchuelo, A.M. (2020). Lupinus pilosus. The IUCN Red List of Threatened Species. https://dx.doi.org/10.2305/iucn.uk.2020-2.rlts.t19379279A100333517.en
Sfairi, Y., Lahcen, O., Al Feddy, M. N., & Abbad, A. (2012). Dormancy-breaking and salinity/water stress effects on seed germination of Atlas cypress, an endemic and threatened coniferous species in Morocco. African Journal of Biotechnology, 11(19), 4385-4390. https://doi.org/10.5897/ajb11.3271
Sholars, T. & Riggins, R. (2022). Lupinus. in Jepson Flora Project (Eds.) Jepson eFlora, Revision 11.
Swiecicki, W., Rybczynski, J., & Swiecicki, W. K. (2000). Domestication and genetics of the yellow lupin (Lupinus luteus L.) and the biotechnological improvement of lupins. Journal of Applied Genetics, 41(1), 11-34.
Wink, M., Meißner, C., & Witte, L. (1995). Patterns of quinolizidine alkaloids in 56 species of the genus Lupinus. Phytochemistry, 38(1), 139-153. https://doi.org/10.1016/0031-9422(95)91890-D
Taifour H. (2017). Jordan Plant Red List II. Royal Botanic Garden. p 966. Amman, Jordan
التنزيلات
منشور
كيفية الاقتباس
إصدار
القسم
الرخصة
الحقوق الفكرية (c) 2025 المجلة الأردنية في العلوم الزراعية

هذا العمل مرخص بموجب Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
##plugins.generic.dates.accepted## 2025-08-28
##plugins.generic.dates.published## 2025-09-01