نشاط مضادات الأكسدة والفحص الكيميائي النباتي وتوصيف LC / MS-MS لمحتوى البوليفينول في الموائل الأردنية لمستخلص الأوراق المائية Pennisetum setaceum

المؤلفون

  • Lidia Al-Halaseh قسم الكيمياء الصيدلانية، كلية الصيدلة، جامعة مؤته، الأردن
  • Reem Issa قسم الصيدلة الاساسية، كلية الصيدلة، جامعة الشرق الاوسط، الأردن
  • Rana Said مركز الابحاث الدوائية، كلية الصيدلة، جامعة عمان الاهلية، الأردن
  • Rawan Al-suhaimat قسم الكيمياء الصيدلانية، كلية الصيدلة، جامعة مؤته، الأردن

DOI:

https://doi.org/10.35516/jjps.v17i4.2442

الكلمات المفتاحية:

P.setaceum، كروماتوغرافي، سبكتروسكوبي، نواتج طبيعية ثانوية، الفحص الكيميائي النباتي

الملخص

الخلفية: Pennisetum setaceum هو نبات سهل النمو وقابل للتكيف بدرجة كبيرة ويتميز بالسيقان الجميلة والأوراق الملونة. لذلك،تم استخدام هذا النوع كوسيلة خضراء في الحفاظ على التوازن البيئي واستعادته وتطوير التنوع البيولوجي. بالإضافة إلى ذلك،تم التحقق من بعض الاستخدامات الطبية المختلفة لهذا النبات. تم سابقا إجراء بعض الابحاث البسيطة لاستكشاف النشاط المضاد للأكسدة والتركيب الكيميائي النباتي لأوراق هذا النبات.  

الأهداف: يهدف  هذا البحث إلى تقييم التركيب الكيميائي النباتي وفعالية مضادات الأكسدة للموئل الأردني لنبات P.setaceum. المنهجية: تم تحضير المستخلص المائي للأوراق عن طريق النقع. أجريت اختبارات تحليلية لتحديد المستقلبات الثانوية النشطة بيولوجيا والناتجة عن الأيض الثانوي باستخدام إجراءات مرجعية. تم تحديد نشاط مضاد الاكسدة للجذور الحرة للمستخلص باستخدام مقايسة DPPH (2،2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl) ومقارنتها بحمض الأسكوربيك. تم إجراء تحليل LC-MS/MS مع التركيز على المحتوى الفينولي للمستخلص.  

النتائج: كشفت الاختبارات التحليلية عن وجود للستيرويدات، ترايتيربينويدات، قلويدات، العفص، الفلافونويد، والبوليفينول، في حين لم يلاحظ وجود الصابونينات. عند تركيز 4 ملغ/مل، كان نشاط مضاد الاكسدة للجذور الحرة للمستخلص 41.32٪ فقط، مقارنة ب 85.54٪ لحمض الأسكوربيك. كشف تحليل LC-MS/MS عن وجود ثمانية مركبات فينولية مختلفة:حمض السكسينيك، وألدهيد البروتوكاتيكويك، وحمض 2،5-ثنائي هيدروكسي بنزويك، و2،3-ترانس-3،4-ترانس-ليوكوسيانيدين، وأبين، وإيزو-أورينتين، وأبيجينين، و5،6،4'-ثلاثي هيدروكسي-7،3'-ديميثوكسي فلافون.  

الخلاصة: وجود عدد محدود من المركبات الفينولية في مستخلص P.setaceum قد يفسر ضعف نشاطه المضاد للأكسدة. هناك حاجة إلى مزيد من البحث لتحديد المستقلبات الثانوية الأخرى (غير الفينولية)، والتي من شأنها أن تعزز فهمنا لدور هذا النوع النباتي في التطبيقات الزراعية أو البيئية أو الطبية. 

المراجع

Zhou S., Wang C., Yin G., Zhang Y., Shen X, Pennerman K.K., Zhang J., Yan H., Zhang C., Zhang X. and Ren S. Phylogenetics and diversity analysis of Pennisetum species using Hemarthria EST‐SSR markers. Grassland science. 2019; 65(1):13-22. DOI: https://doi.org/10.1111/grs.12208

Wang C., Yan H., Li J., Zhou S., Liu T., Zhang X. and Huang L. Genome survey sequencing of purple elephant grass (Pennisetum purpureum Schum ‘Zise’) and identification of its SSR markers. Molecular Breeding. 2018; 38:1-0. DOI: https://doi.org/10.1007/s11032-018-0849-3

Zhang Y., Yuan X., Teng W., Chen C. and Wu J. Identification and phylogenetic classification of Pennisetum (Poaceae) ornamental grasses based on ssr locus polymorphisms. Plant Molecular Biology Reporter. 2016; 34:1181-92. DOI: https://doi.org/10.1007/s11105-016-0990-2

Guo Y., Liu L., Yue Y., Fan X., Teng W., Zhang H., Gao K., Guan J., Chang Z. and Teng K. Development of SSR Markers Based on Transcriptome Sequencing and Verification of Their Conservation across Species of Ornamental Pennisetum Rich. (Poaceae). Agronomy. 2022; 12(7):1683. DOI: https://doi.org/10.3390/agronomy12071683

Nguyen M.L. Potential Elimination of Chromium (VI) by Chemically Biochar Derived from Pennisetum Setaceum. Journal of Technical Education Science. 2022; 28(73):74-9. DOI: https://doi.org/10.54644/jte.73.2022.1177

Melo A.F., Oliveira J.F., Fia F.R., Fia R., Matos M.P. and Sanson A.L. Microcontaminants Removal in Constructed Wetlands with Different Baffle Arrangements and Cultivated with Pennisetum setaceum. Water, Air, & Soil Pollution. 2022; 233(8):322. DOI: https://doi.org/10.1007/s11270-022-05822-3

Rowe H.I., Sprague T.A. and Staker P. Comparing common fountain grass removal techniques: cost efficacy and response of native plant community. Biological Invasions. 2022; 24(12):3817-30. DOI: https://doi.org/10.1007/s10530-022-02879-3

Oprea M.I., Daniela Giosanu M. Decorative herbs, a green solution for urban arrangements. Current Trends in Natural Sciences. 2022; 11(21):356-64. DOI: https://doi.org/10.47068/ctns.2022.v11i21.039

Madani I., Tahir Y.F. and Nour S.M. Ethnobotanical Study of Medicinal Plants Used by El Kababish Tribe in Ga’ab El Lagia Oasis, West Dongola (Sudan). Nyame Akuma Bulletin. 2014; 82:91-9.

Al-Halaseh L.K., Al-Jawabri N.A., Al-Btoush H., Al-Suhaimat R., Majali S., Hajleh M.N., Ali A.S. and Ahmed M A. In vivo investigation of the potential hypoglycemic activity of Pennisetum setaceum: Justification of the traditional use among Jordanians. Research Journal of Pharmacy and Technology. 2022;15(7):3185-9. DOI: https://doi.org/10.52711/0974-360X.2022.00533

Al-Halaseh L.K., Hajleh M.N. and Al-Samydai A.M. Weight reduction in response to unauthorized treatment in a poorly controlled obese woman. Biomedicine. 2022; 42(2):410-2. DOI: https://doi.org/10.51248/.v42i2.1291

Ojo O.A., Ojo A., Barnabas M., Iyobhebhe M., Elebiyo T.C., Evbuomwan I.O. and Oloyede O.I. Phytochemical properties and pharmacological activities of the genus Pennisetum: A review. Scientific African. 2022; 16, e01132.‏ DOI: https://doi.org/10.1016/j.sciaf.2022.e01132

Beckwith A.G., Zhang Y., Seeram N.P., Cameron A.C. and Nair M.G. Relationship of light quantity and anthocyanin production in Pennisetum setaceum cvs. Rubrum and Red Riding Hood. Journal of agricultural and food chemistry. 2004; 52(3):456-61. DOI: https://doi.org/10.1021/jf034821+

Liu L., Teng K., Fan X., Han C., Zhang H., Wu J. and Chang Z. Combination analysis of single-molecule long-read and Illumina sequencing provides insights into the anthocyanin accumulation mechanism in an ornamental grass, Pennisetum setaceum cv. Rubrum. Plant Molecular Biology. 2022; 109(1-2):159-75. DOI: https://doi.org/10.1007/s11103-022-01264-x

Yang X., Yang N., Zhang Q., Pei Z., Chang M., Zhou H., Ge Y., Yang Q. and Li G. Anthocyanin biosynthesis associated with natural variation in autumn leaf coloration in Quercus aliena accessions. International Journal of Molecular Sciences. 2022; 23(20):12179. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms232012179

Cock I.E. and Kukkonen L. An examination of the medicinal potential of Scaevola spinescens: Toxicity, antibacterial, and antiviral activities. Pharmacognosy Research. 2011; 3(2):85. DOI: https://doi.org/10.4103/0974-8490.81955

Al-Halaseh L.K., Sweiss M.A., Issa R.A., AlKassasbeh R., Abbas M.A., Al-Jawabri N.A., Hajleh M.N. and Al-Samydai A.M. Nephroprotective Activity of Green Microalgae, Chlorella sorokiniana Isolated from Jordanian Water. Journal of Pure & Applied Microbiology. 2022; 16(4). DOI: https://doi.org/10.22207/JPAM.16.4.49

Lali M.A., Issa R.A., Al-Halaseh L.K., Al-Suhaimat R. and Alrawashdeh R. Reduction of reproductive toxicity in murine sperm model using Moringa peregrina leaves extracts. Journal of Applied Pharmaceutical Science. 2023; 13(11):050-6.

Mohammed H.A., Ali H.M., Qureshi K.A., Alsharidah M., Kandil Y.I., Said, R. and Khan R.A. Comparative phytochemical profile and biological activity of four major medicinal halophytes from Qassim flora. Plants. 2021; 10(10), 2208.‏ DOI: https://doi.org/10.3390/plants10102208

Saxena R.K., Saran S., Isar J. and Kaushik R. Production and applications of succinic acid. In: Current developments in biotechnology and bioengineering. 2017; 601-630. DOI: https://doi.org/10.1016/B978-0-444-63662-1.00027-0

Zhang Q.C., Zhao Y. and Bian H.M. Antiplatelet activity of a novel formula composed of malic acid, succinic acid and citric acid from Cornus officinalis fruit. Phytotherapy Research. 2013; 27(12):1894-6. DOI: https://doi.org/10.1002/ptr.4934

Nidamarthi H.K., Choudhury M. and Velmurugan D. Understanding the binding mechanism of succinic acid against phospholipase A2 from bee venom. Journal of Biochemical and Molecular Toxicology. 2021; 35(4): e22715. DOI: https://doi.org/10.1002/jbt.22715

Kakkar S. and Bais S. A review on protocatechuic acid and its pharmacological potential. International Scholarly Research Notices. 2014; 2014:1-9. DOI: https://doi.org/10.1155/2014/952943

Lisov A., Vrublevskaya V., Lisova Z., Leontievsky A. and Morenkov O. A 2, 5-Dihydroxybenzoic acid–gelatin conjugate: the synthesis, antiviral activity and mechanism of antiviral action against two alphaherpesviruses. Viruses. 2015; 7(10):5343-60. DOI: https://doi.org/10.3390/v7102878

Jun J.H., Lu N., Docampo-Palacios M., Wang X. and Dixon R.A. Dual activity of anthocyanidin reductase supports the dominant plant proanthocyanidin extension unit pathway. Science Advances. 2021; 7(20):1-11. DOI: https://doi.org/10.1126/sciadv.abg4682

Mencherini T., Cau A., Bianco G., Loggia R.D., Aquino R.P. and Autore G. An extract of Apium graveolens var. dulce leaves: Structure of the major constituent, apiin, and its anti‐inflammatory properties. Journal of pharmacy and pharmacology. 2007; 59(6):891-7. DOI: https://doi.org/10.1211/jpp.59.6.0016

Malik A., Jamil U., Butt T.T., Waquar S., Gan S.H., Shafique H. and Jafar T.H. In silico and in vitro studies of lupeol and iso-orientin as potential antidiabetic agents in a rat model. Drug design, development and therapy. 2019; 1501-13. DOI: https://doi.org/10.2147/DDDT.S176698

Salehi B., Venditti A., Sharifi-Rad M., Kręgiel D., Sharifi-Rad J., Durazzo A., Lucarini M., Santini A., Souto E.B., Novellino E. and Antolak H. The therapeutic potential of apigenin. International journal of molecular sciences. 2019; 20(6):1305. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms20061305

Rampogu S., Gajula R.G. and Lee K.W. A comprehensive review on chemotherapeutic potential of galangin. Biomedicine & Pharmacotherapy. 2021; 141:111808. DOI: https://doi.org/10.1016/j.biopha.2021.111808

Russo M., Russo G.L., Daglia M., Kasi P.D., Ravi S., Nabavi S.F. and Nabavi S.M. Understanding genistein in cancer: The “good” and the “bad” effects: A review. Food chemistry. 2016; 196:589-600. DOI: https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2015.09.085

Wang S.H., Liang C.H., Liang F.P., Ding Y., Lin S.P., Huang G.J., Lin W.C. and Juang S.H. The inhibitory mechanisms study of 5, 6, 4′-trihydroxy-7, 3′-dimethoxyflavone against the LPS-induced macrophage inflammatory responses through the antioxidant ability. Molecules. 2016; 21(2):136. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules21020136

Alkhatib R. Chemical Composition of Essential Oils Total Phenols and Antioxidant Activity of Achillea fragrantissima and A. santolina Grown in Syria. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024; 17(3):594-602. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i3.2389

Puspitasari E., Triatmoko B., Dianasari D., Muslichah S. and Nugraha A.S. Assessment of Extraction Methods Effects on the Biological Activities (Antioxidant and Antiamylase) and Chemistry (Total Phenolics and Flavonoids) of Guazuma ulmifolia Leaves. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2024; 17(1). DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v17i1.1171

Naskar A., Dasgupta A. and Acharya K. Antioxidant and cytotoxic activity of Lentinus fasciatus. Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences. 2023; 25;16(1):72-81. DOI: https://doi.org/10.35516/jjps.v16i1.1064

التنزيلات

منشور

2024-12-20

كيفية الاقتباس

Al-Halaseh, L., Issa, R., Said, R., & Al-suhaimat, R. (2024). نشاط مضادات الأكسدة والفحص الكيميائي النباتي وتوصيف LC / MS-MS لمحتوى البوليفينول في الموائل الأردنية لمستخلص الأوراق المائية Pennisetum setaceum . Jordan Journal of Pharmaceutical Sciences, 17(4), 706–716. https://doi.org/10.35516/jjps.v17i4.2442

إصدار

القسم

Articles

المؤلفات المشابهة

يمكنك أيضاً إبدأ بحثاً متقدماً عن المشابهات لهذا المؤلَّف.